NA CATLITIC DNS ES CR ENTRANTS

MITIEURPB/Ee:

Milieu de conservation... LOURAGE

Vi tan 10 ee Be A sv MILIEU Be:

Milieu #d'épreuve serez 100 MRC

Nitanmines Be ARTE 05 m6 MIMEUNRC/c:

Milieu de conservation.......... 10,0 cc:

Nico lamIde Eee Me ere OISE

MILIEU :C/e:

Milieu = d'ÉDreUN CRE EAU a 10046

Nicotylamider reset re OSME MILIEU D/c:

Milieu de conservation.......... 10/0RCC:

Vitamine Bree rer DS

MILIEU*D/e:

Milieu d’épreuve Vitamine Bee Re OST

MIBIEU E/c:

Milieu de conservation.......... 10,0 cc.

Pantothénate de calcium. ....... O4 MILIEU E/e:

Ne éDrEUv eme CL nn 10,0 cc.

Pantothénate de calcium........ 0,4 - y MILIEU F/c:

Milieu de conservation.......... 10/0. cc:

SOL NO IS M EE RES 0,005 y MILIEU Fe:

NITOURAÉDEEU Ve SE owner 10: 0ycc.

LOL RD A Lo et in 0,005 y MILIEU G/c:

Milieu de conservation.......... 10/0 cc:

NCITORMONIQUE 22 et rate 0,025 y MILIEU G/e:

NHMÉTATÉDERUVES en om IVOMSEC

ACIdeAOlIQUeR NT rue. 0,025 y

Au cours de notre travail et pour les différents milieux employés, nous utiliserons toujours trois tubes par substrat.

A titre comparatif, nous avons effectué les mêmes recherches sur milieu de SABOURAUD dépourvu de tout facteur de croissance pour avoir un test de comparaison.

Ensemencements.

Tous nos ensemencements ont été faits de la manière suivante: On dispose plusieurs parcelles de culture provenant d’une souche entretenue sur milieu de SABOURAUD dans un tube contenant enivron 5 cc. de solution physiologique stérilisée. On émulsionne soigneusement ces parcelles de culture avec un ensemenceur. On laisse ensuite en contact pendant un jour en agitant le tube de temps en temps, puis on laisse déposer les gros flocons. — L’ensemencement s’effectue au moyen d’une dose de cette émulsion surnageante stable en la déposant à la surface du milieu.

Les tubes sont mis à l’étuve à 24°.

Nous essayons d'exprimer les résultats dans le tableau suivant en marquant les taux de rendement par un nombre croissant de signe +.

——————p———ZZ—ZE————EELE Lo

Ense-

Témoin

imencé | 4/C| À/e| B/c| B/e) C/c| C/e | D/c| D/e| E/c | E/e | F/c| F/el G/e | G/e | : sa

9jours| DEN METRE SNS) QU en At ar e Re PI PRE" Q TETE

D LS D orne Perret RE ee

ZOO RSR CICR EN RSS ee ee PR en ne PP) ne | BRe

ments entre les milieux envisagés dans une série d’ rience.)

(Les signes ++ n’expriment que le rapport des rende-

expé-

Interprétation:

Il résulte du tableau ci-dessus que trois vitamines semblent jouer un rôle plus ou moins important dans la croissance de Trichophyton cratériforme, ce sont en premier lieu l’Acide folique, puis le Pantothénate de calcium et la Nicotylamide, cette dernière semble n’avoir qu’une faible influence à la concentration employée.

Les différences entre les milieux sont du reste moindres qu'on ne peut exprimer par les signes. Mais il semble être certain que l’Acide folique est la plus active des trois vitamines. Mentionnons encore que tous les milieux d’épreuve sont un peu supérieurs à ceux de conservation. Ce fait ne semble pas dépendre des vitamines, mais de l’action de l’aliment hydrocarboné dans ces milieux. On a répété cette série d'expériences et les résultats sont sensiblement identiques à ceux de la série précédente.

Une nouvelle série de recherches a été effectuée en changeant les concentrations des trois vitamines: Acide folique, Pantothénate de calcium et Nicotylamide.

On a ajouté les concentrations suivantes aux 10 cc. milieu de conservation, respectivement au milieu d’épreuve:

Ces milieux donnent des résultats ni meilleurs ni plus mauvais que ceux obtenus sur les tubes de la première série. Il semble que les concentrations employées soient trop faibles. En tout cas, on ne peut constater aucune différence entre les diverses concentrations.

Nous avons donc préparé une nouvelle série de milieux en employant des solutions vitaminiques beaucoup plus fortes.

1 cc. de la solution contient:

INCOnCA Conc-2 IConc5

Pour cette série, nous nous sommes décidé à emplover d’une part les sept vitamines associées dans une seule solution en trois concentrations différentes, et, d’autre part, d'ajouter à nos milieux les solutions vitaminiques aux trois concentrations aussi, mais en n’employant que les trois vitamines qui semblent favoriser la croissance, c’est-à-dire l'Acide folique, le Pantothénate de calcium et la Nicotylamide.

On introduit 0,3 cc. dans chaque tube.

Nous avons employé de nouveau le milieu de SABOURAUD comme substrat-test. Mais il faut faire quelques remarques concernant la peptone et le glucose.

Travaillant en Suisse, nous employons dorénavant la Peptonum siccum SIEGFRIED. Elle se prête favorablement à l'usage bactériologique, puisqu’elle contient une quantité considérable de Tryptophane.

Son taux d’azote total est de 14%.

En ce qui concerne le glucose, nous utilisons le Glucosum depuraltum SIEGFRIED qui contient 10% d’eau et des traces de chlorures.

Voici les milieux préparés:

MILIEU A/0: Milieu de SABOURAUD simple.