PROGRAMME DES CONFÉRENCES

1” conférence. — But et importance de la parasitologie." — Utilité de l’étude comparée de la parasitologie. — Classification des parasites. — Mode d’action des parasites : a) action mécanique ; b) action toxique ; c) action spoliatrice. — Réactions locales' de l’hôte contre le parasite : a) phagocytose; b) tumeurs inflammatoires; c) sclérose et enkystement; d) formations d’épithé-

— so¬

lium pavimenteux stratifié aux dépens d’épithélium cylindrique simple ; e) formations adénomateuses du tube digestif, des conduits biliaires, etc. — Réactions générales de l’hôte parasité : a) modifications du sang, importance diagnostique des variations dans les formules sanguines; b) modifications des autres organes : organes lymphoïdes, hématopoiétiques, etc. — Diagnostic du parasitisme : a) par la découverte du parasite lui-même (gale, anneaux des Cestodes, etc.); b) par l’étude du sang; c) par l’étude des matières fécales ; d) par l’étude de diverses sécrétions (expectoration pulmonaire, urine, etc.).

Au cours de cette première conférence, divers types de parasites et les tumeurs qu’ils produisent sont montrés aux élèves. Cette leçon se termine par l’explication sommaire des principales préparations des boîtes de type A que les élèves doivent étudier successivement.

2' con/’érence. — Technique bactériologique. — Coloration du sang et des parasites qu’il peut contenir. — Examen des matières fécales, leur importance en pathologie et en médecine légale.

3® conférence. — Amibes. Coccidies. Sarcosporides.

4® conférence. — Hémosporidies : action sur les hématies, mode de transmission.

conférence. — Prophylaxie du paludisme. Moustiques. Maladies produites par les Flagellés ou Flagelloses : maladie du sommeil, kala-azar, bouton d’Orient.

-Tr'émaSTs!'' ~ Helminthes. - Cestodes.

^i J-conz-éreuce. - Trématodes (suite). Nématodes. - Hiru- 8* conférence. ~ Arthropodes : Arachnides, Insectes.

tion parasites (suite). - Classifica-

2“ TRAVAUX PRATIQUES DE MÉDECINE COiONIALE

Depuis l’année 1903 jusqu’à ce jour, nous avons été chargé par M. le professeur R. Blanchard de diriger les travaux pratiques de parasitologie (à l’exception de la bactériologie), à l’usage des élèves de l’Institut de médecine coloniale.

Avec le concours zélé de notre excellent collègue et successeur le D*' Langeron, nous avons pu faire effectuer aux élèves les vingt et une manipulations dont le détail est donné ci-après^

l’^® Manipulation. — Recherche de diverses espèces d’Amibes dans l’eau douce. — Étude sommaire des êtres vivants de l’eau (Infusoires, Nématodes libres. Diatomées). — Montage sur lames de trois coupes de dysenterie amibienne.

2® Manipulation. — Coloration des coupes distribuées et étude de la distribution des Amibes dans les tissus, formation dés ulcérations spécifiques. — Recherche des Infusoires dans Ip ^ros intestin de la Grenouille verte. — Montage sur lames dé trois coupes de Coccidium cuniculi et de Coccidium hominis; d’une coiipé de la Coccidie du Poulpe et d’une coupe de la Coccidie de la Seiche.

3® Manipulation. — Coloration et étude des coupes distribuées. Cycle évolutif de la Coccidie intestinale du Lapin comme type d’évolution d’un sporozoaire (Schizogonie dans les points récemment envahis ; sporogonie dans les lésions anciennes : Macrogamétocyte, microgamétocytes et microgamètes, Oocystes). — Étude de la Coccidie du Poulpe et de celle de la Seiche. Grâce au volume des parasites, il est facile de différencier les éléments qui caractérisent la sporogonie, il est facile de suivre les microgamètes à travers les mailles du tissu conjonctif. La formation des sporozoïdes-à l’intérieur des spores se rencontre à tous ses stades sur les coupes et ne nécessite pas une culture en dehors du corps de l’animal comme c’est le cas pour la Coccidie du Lapin.

4® Manipulation. — Coloration de frottis de spores de la Sarcosporidie de l’œsophage du Mouton parle mélange bleu Borrel-Éosine. — Montage de deux coupes de Sarcosporidies ; Coupes d’organes d’un individu mort d’un accès de paludisme pernicieux (pancréas, rein, rate et foie).

5« Manipulation. - Coloration des coupes de la manipulation nrécédente Recherche des corps en rosace dans les capillaires des organes; ces formations sont très nombreuses, certains capillaires en sont bourrés et ne renferment plus de globules rouges. Recherche des leucocytes mélanifères. Recherche du pigment noir dans le foie et la rate et du pigment ocre dans le foie. Différenciation facile de ces pigments après action du sulfhydrate d’ammoniaque.

6« Manipulation. — Coloration au bleu Borrel-Eosine des, hématozoaires endoglobulaires du sang d’oiseau (Padda), de la Bahésie (= Piroplasme) du Chien ou du Bœuf; de l’Hémogrégarine de la Tortue d’eau. —Différenciation facile des macrogamètes et des microgamètes à'Halteridium dans le sang coloré du Padda. Examen de sang d’oiseau frais pour reconnaître les flagelles ou microgamètes émis par les éléments parasitaires mâles.

Cette première manipulation sur les parasites du sang a pour but de familiariser les élèves avec la technique très simple, que nous.recommandons pour leur coloration.

,7® Manipulation. — Étude des trois parasites de la fièvre paludéenne de l’Homme. Coloration du parasite de la fièvre tierce hémgnQ [Plasmodium vivax). Remarquer l’hypertrophie du globule et l’existence des granulations de Schüffner. Gamètes; rosaces. Coloration du parasite de la fièvre tierce maligne [Plasmodium falciparum). Reconnaître les granulations de Maurer faciles à distinguer de celles de Schüffner. Gamètes ou corps en croissants. Coloration du parasite de la fièvre quarte [Plasmodium malariæ). Constater l’absence de granulations dans l’hématie parasitée et son atrophie très nette; corps en rosace.

8® Manipulation. — Études des Flagellés. Recherche à l’état frais (le Trypanosomes et de Tfypanoplasmes dans le sang de divers animaux. Recherche des Trichomonas dans l’intestin du Cobaye ou dans celui d’une Sangsue d’eau douce très commune aux environs de Paris [Hæéopis sanguisuga). Coloration du Trypanosome de la maladie du sommeil dans des frottis. Coloration du Trypanosoma inopinatum dans le sang de Grenouilles infestées expérimentalement. Constater l’intensité de la réaction phagocytaire dans cette maladie, certains macrophages englobent quelquefois dix ou vingtTrypanosomes.Coloration du Trypanoplasme

^ 9® Manipulation. — Coloration de nouveauxfrottis de parasites du sang. Montage sur lames de deux-coupes de cerveau et d’une

coupe de cervelet d’un Nègre mort de maladie du sommeil et ayant des lésions typiques.

Manipulation. — Coloration des coupes de la précédente manipulation. Remarquer la leptoméningite très nette qui, au point de vue anatomo-pathologique, caractérise la maladie du sommeil. Les vaisseaux sanguins du système nerveux sont entourés d’une gaine de cellules embryonnaires. Les lésions des cellules nerveuses ne peuvent être étudiées que par une technique spéciale (méthode de Nissl). Montage d’une coupe de kyste hydatique du foie ou du poumon, d’une coupe de foie humain douvé ; d’une coupe de foie de Mouton parasité par la grande Douve et d’une coupe de foie de Mouton parasité par la petite Douve.

Manipulation. — Coloration des coupes distribuées à la précédente manipulation. ^ Remarquer sur la coupe de kyste hydatique la réaction défensive de l’hôte ; la membrane germinative stratifiée etplissée; les vésicules prolifères. Sur les coupes de foie humain remarquer la sclérose qui entoure les canaux biliaires hypertrophiés et adénomateux ainsi que la dégénérescence graisseuse des cellules hépatiques. Sur les coupes de foie de Mouton étudier la sclérose et l’atrophie du tissu hépatique.

Manipulation. — Étude des Moustiques. Montage dans la gélatine glycérinée de la larve et de la nymphe de Culex; du mâle et de la femelle de Culex; de la larve et de l’adulte (mâie ou femelle) d'Anophetes. Étude de la nervure des ailes, des pièces buccales, des écailles, des ongles et des éléments anatomiques capables de faciliter la détermination de ces insectes. — Cette manipulation se faisant au mois de novembre, il est impossible de la compléter par la dissection de Moustiques frais, ce qui permettrait d’étudier le tube digestif, les tubes de Malpighi et les glandes salivaires dont l’importance est très grande en parasitologie.

13® Manipulation. — Étude des Cestodes. Constater la vivacité relative des Cestodes des animaux à sang chaud quand on les examine dans la solution physiologique chauffée à 37". La démonstration peut se faire avec les Cestodes si communs dans l’intestin du Chien. Rechercher, dans la dernière portion de l’intestin grêle du Surmulot, des Hymenolepis; étudier leur mode de fixation, regarder la tête et les crochets au microscope. Les :œufs très transparents permettent de bien suivre les mouvements des embryons hèxacanthes ; en pressant sur le couvre-objet, les embryons sortent de leur œuf et effectuent des mouvements caractéristiques qui permettent de bien comprendre leur pénétration à travers

les parois du tube digestif. Rechercher dans l’intestin du Chien ou du Chat des Dipylidium. Monter dans le lactophénol une tete armée de crochets du Tænia serrata du Chien. Disséquer et monter la tête du Tænia solium extraite des cysticerques du Porc. Monter des œufs de Tænia saginata dans du lactophénol. Examiner des œufs de Bothriocéphale par dilacération d’un anneau de ce ver, constater la présence d’un clapet.

14^ Manipulation. — Étude des Trématodes. Étudier à l’état frais, par compression, la petite Douve du foie du Mouton, en distinguer les divers organes. Étudier de la même façon la grande Douve du même animal. Colorer au carmin chlorhydrique des petites Douves et les monter dans le baume ou dans la gélatine glycérinée. Revoir les coupes colorées à la 12® manipulation et se rendre compte de la structure histologique des Douves ainsi que des réactions qu’elles produisent chez l’hôte parasité. Examiner des coupes de Poumon parasité par le Paragonimus Westermanni'ei constater la formation de l’épithélium pavimenteux stratifié.

15® Manipulation. — Étude des Nématodes. Constater que les Nématodes qui paraissent immobiles quand on les examine à la température ordinaire effectuent des mouvements très violents à la température de 37®. (Examiner dans l’eau physiologique, à 37“, des Ascaris du Chat ou du Chien, des Oxyures et des Trichocéphales de la Souris grise.) Étudier des Ascarides des deux sexes (Ascaride du Cheval ou du Porc). Monter dans le lactophénol, des Oxyures (Oxyure de la Souris grise). Monter dans le lactophénol, un peu du contenu de l’intestin grêle d’un Rat tri chiné depuis une semaine pour étudier les Trichines adultes, mâles et femelles. Dissocier et monter dans le lactophénol un fragment de muscle de Rat trichiné. Examiner par compression, à l’état frais, de la viande trichinée. Monter sur lame une coupe de langue de Rat mort de trichinose expérimentale.

16® Manipulation. — Études des Nématodes (suite). Monter sur lame une coupe de tumeur à Filaria volvulus, ainsi qu’une coupe de peau éléphantiasique. Colorer les coupes et reconnaître dans la tumeur à Filaria volvulus de nombreuses sections du corps des Pilaires femelles et mâles, les tubes utérins sont remplis de Microülaires qui, une fois pondues, se fraient un passage a travers le tissu conjonctif. Dans la peau éléphantiasique reconnaître 1 intégrité de l’épiderme et la sclérose intense du derme.

Hp ^ ^ Grenouille verte présentant

de nombreuses Microfilaires pourvues d’une gaine.

W Manipulation. — Étude des matières fécales et de l’urine. Monter une parcelle de matières dans du lactophénol, directement, ou après dilution si la consistance l’impose, reconnaître les débris végétaux et animaux de l’alimentation : fragments de fibres musculaires, tissu conjonctif, faisceaux spiralés, annelés, ponctués des faisceaux libéroligneux des végétaux, poils végétaux, cellules végétales, épiderme végétal avec ses stomates souvent caractéristiques. Reconnaître les cellules intestinales desquamées au cours de la digestion. Ne pas confondre des grains de pollen, des segments de faisceaux annelés des végétaux ou des spores de divers Champignons et en particulier des Truffes avec de$ œufs de parasites.

Rechercher des oocystes de Coccidie dans des crottes de Lapin infesté ; examiner des déjections humaines contenant des œufs d’Ascaride, de Trichocéphale, d’Oxyure,d’Uncinaire. Étant donnée la rareté des affections à Douves chez l’homme dans nos contrées, se familiariser avec l’aspect que présentent leurs œufs dans les matières en examinant des déjections de Mouton douvé. Monter et examiner des œufs de Linguatule et d’Acanthocéphale. Chercher dans le sédiment urinaire d’un individu atteint d’hématurie d’Égypte les œufs caractéristiques du Shistosomum hæmatobium. Examiner des embryons d’Uncinaire provenant d’une culture.

18® Manipulation. —• Monter et colorer une coupe d’adénome bilharzien de l’intestin, remarquer l’abondance des œufs en cer-^ tains endroits. Étude des Acariens parasites : les Tiques. Étude des Insectes parasites : monter, dans le baume de Canada ou la gélatine glycérinée, des Puces et leurs larves, remarquer les caractères des diverses parties du corps qui permettent de distinguer les espèces. Cette détermination, étant donné le mode de transmission de la peste, a une réelle importance. Disséquer et monter les pièces buccales de diverses Mouches piqueuses. Monter plusieurs coupes d’actinomycose du Bœuf.

19® Manipulation. — Colorer une coupe d’actinomycose àl’hématéine-éosine pour voir les réactions inflammatoires des tissus parasités (cellules géantes, cellules épithélioïdes, cellules embryonnaires). Colorer une coupe au Gram, reconnaître les spores mycéliennes dans les vieux grains, les filaments mycéliens et les massues dichotomiques qui souvent pénètrent dans les cellules épithélioïdes. Colorer une coupe d’actinomycose d’abord à l’hématéine puis au Gram, les rapports des tissus et des parasites sont plus faciles à étudier. Monter une coupe de mycétome à grains blancs de Vincent [Discomyces maduvæ) ; une coupe de mycétome à grains noirs classique {Madurella mycetomi) ; une coupe de mycétome à grains noirs produit par VAspergillus Bouffardi.

20® Manipulation. — Colorer les trois coupes distribuées à la précédente séance. Étudier dans chaque coupe les tissus inflammatoires, le mode de progression du Champignon parasite. Constater l’abondance des conidies dans les grains du mycétome à Aspergillus Bouffardi. Faire bouillir un cheveu ou un poil teigneux dans la potasse pour mettre en évidence le parasite.

21® Manipulation. — Cette séance est consacrée à des démonstrations au microscope de préparations rares qui ne peuvent être données en manipulation ou qui demandent une préparation spéciale.

Un certain nombre de microscopes sont disposés de distance en distance sur les tables, et à côté de chaque microscope un croquis indique le point intéressant à remarquer. Les élèves peuvent ainsi voir des coupes montrant l’évolution de la Pilaire de Bancroft, les parasites du Kala-azar, le Spirochète de la syphilis, celui de la fièvre récurrente. L’évolution des parasites du paludisme, l’évolution des Trypanosomes chez les Sangsues. Des coupes de divers Nématodes démontrant comment on peut quelquefois arriver à caractériser le genre de ces Vers, des frottis avec les trois Pilaires du sang les plus communes ; Filüria Bancrofti, F. loa, F. perstans, des coupes de peau atteinte de gale démodectique, des coupes de tissus parasités par des Blastomycètes, des fructifications de diverses Moisissures {Bhizopus, Aspergillus, Pénicillium), etc.