II. — — aumaximumetcloche

i. — avec cloche dont le bord inférieur

s'est recourbé en haut et en dedans.

FiG. 16. — AsUicns du 1" septembre, pris on liberté. Spermatoblastes très jeunes à couche protoplasmique mince, dont le

SPKRMATOGIiNÈSIi CHEZ LES CIUJSTACÉS DÉ::AI'0!)fc:S . 337

noyau est parcouru par un réseau délicat à grains chromophiles très ûas, venant de se diviser par clivage et par voie amitotique.

Fia. 17. — Pagurus striatus du 18 mars. Testicule traité par li liqueur de Muller et les alcools. Coloration par Ihématoxyline.

Diverticule du tube testiculaire présentant de dedans en dehors :

1» Une cavité remplie de deutospermatoblastes présentant à côté du noyau la vésicule céphalique déjà volumineuse ;

2° Une cavité lenticulaire occupée par des protospermatoblastes encore jeuues, mais comprimés et serrés, et ne laissant apercevoir qu'au niveau des angles de rencontre le protoplasme caduc très aminci et très amoindri;

3° La membrane propre du cul-de-sac clivée dans presque toute la partie convexe et terminale du diverticule et renfermant des germes de remplacement déjà volumineux et destinés à former un nid de germes qui coiffera comme une lentille concavo-convexe le nid plan-convexe formé par les spermatoblastes. 11 y a là trois générations différentes d'éléments reproducteurs nettement séparées par des membranes de clivage.

Planche II.

FiG. 1. — Carcinus mœnas du 4 décembre. Testicule traité par la solution aqueuse saturée de sublimé, additionnée de 20 % d'acide acétique. Coloration par le carmin borate. Coupes dans le baume. Objectif F de Zeiss.

Diverticule du tube testiculaire montrant :

1° La cavité du diverticule remplie de deutospermatoblastes à noyaux diffus et semblables à ceux de la fig. 12, de la Pi. I, sauf qu'il y a au centre quelques grains chromophiles plus gros;

2° Deux nids de l'arrière-saison b, c, composés chacun d'une paire de gros noyaux germes provenant d'une division directe. Ces nids vont entrer en prolifération pour remplacer la génération de deutospermatoblastes qui est près de se transformer en spermatozoïdes. Entre la couche 1" et ces nids se trouve une membrane de clivage très délicate, mais cependant bien visible par places ;

338 A. SABATitn.

3" La membrane propre du diveiiicule renfermant des noyaux dont l'un a est eu voie de division amitotique pour devenir le point de départ d'un nid de germes futurs.

FiG. 2. — Même Carcinus mœ/ias. Même préparation. Dans ce divertii'ule. les noyaux de la membrane sont plus volumineux que dans la fig. 1, et leurs divisions amitotiques y sont plus nombreuses et plus avancées.

Fig, 3. — Palinurus vulgaris du 8 janvier. Testicule traité par la solution saturée de sublimé avec 20 % d"acide acétique : Carmin borate. Coupes dans le baume.

Cette coupe représente un diverticule du tube testiculaire dans lequel on voit de dedans en dehors:

1° Une masse de deutospermatoblastes de la 1'° génération mesurant 0™'", 014 et remplissant la grande cavité du cul-de. sac. Leur noyau mesurant Û""",008 renferme la nucléine à l'état de grains nombreux et assez fins, l^eur protoplasme renferme un et parfois deux corpuscules réfringents, se colorant plus vivementpar le carmin que ne l'indique la figure. La plupart de ces corpuscules sont arrondis, mais l'un d'eux a une forme étoilée. Ces corpuscules ou Nebenkern existent dans presque toutes les cellules, mais non dans toutes. Ils paraissent de nature nucléinienne. Parmi ces deutospermatoblastes, il n'y a pas un seul noyau germe. Tous ont été transformés en spermatoblastes.

2° Une membrane qui limite ce grand cul-de-sac, et qui présente par places des clivages renfermant dans leurs cavités des noyaux déjà volumineux et venant de se diviser. Ces noyaux pourrontdevenir ultérieurement la source de germes.

3° Une couche de cellules de formes et de dimensions diverses, constituant une lentille concave-convexe. C'est le nid appelé à fournir la génération qui succédera immédiatement à celle de la masse interne. On y voit :]l°des protospermatoblastes de dimensions variées. Sur la préparation on en voit trois qui vont en décroissant^vers l'angle ou le bord de la lentille. Le plus gros a 0""",02 de diamètre, el.son noyau mesure O^^jOn. On voit que les dimensions de cet élément sont supérieures à celles des éléments de la couche centrale qui ont subi une première division. Les noyaux renferment moins de chromatine que ceux de la masse^contrale, et cette dernière forme des nucléoles ou nœuds plus volumineux.

Le protoplasme no renferme pas de Nebenkern : 2° des noyaux ou germes de blastème de dimensions variées, plongés dans un protoplasme commun finement granuleux- Les dimensions du gros noyau placé au voisinage du plus petit des protospermatoblabtes permettent de saisir le passage des petits noyaux gei'mes au.vspGrmatoblastes volumineux,

4" Une membrane limitante externe renfermant des noyaux aplatis, qui sont à l'état quiescent mais qui sont appelés, en se divisant et en se multipliant, à fournir des nids de germes à venir.

Les Nebenkern d"aspect nucléinien des deutospermatoblastes de la première génération me portent à les considérer comme résultant de la première mitose.

FiG. 4. Paliîiwus vulgaris du 8 janvier. Même préparation ; mais

coloration par le carmin aluné.

Coupe d'un diverticule montrant de dedans en dehors : l°Des protospermatoblastes en trainde sediviser mitotiquement.

La plupart possèdent un beau faisceau avec plaquée juatoriale

composée de très nombreux bâtonnets chromatiques ; l'une

des plaques est vue de face. Dans un cas l'élément nucléinien

est à l'état do peloton qui se fragmente. Aucune cellule ne possède de Nebenkern, ou corps paranu

cléaire.

2° Une couche ou cloison comprenant une série de noyaux

germes compris entre 2 lames ou membranes de clivage ;

cette couche se continue manifestement à la périphérie avec

la membrane propre du diverticule.

3o Une couche de jeunes spermatoblastes avec quelques

noyaux germes, déjà volumineux, moins colorés que ceux

de la cloison, et près de se transformer en spermatoblastes. 4» Une membrane propre renfermant quelques petits noyaux

aplatis, dont deux paires résultent d'une division directe

récente, et qui sont appelés à fournir les nids de germes à

venir.

Ce diverticule appartenant au même animal que celui de la

fig. 3 est dans une période un peu moins avancée que ce

dernier.

FiG. 5. Maja squiiiado du 26 mars. Testicule traité par le mélange de solution saturée de sublimé et 10 ^/o d'acide acétique. Coloration sur coupes soit par le carmin aluné, soit par

3^0 A. SAL'ATIEP. .

l'hrmntoxiliiie. La cciipe irontre un divertirule du lube tpsticulaire présentant de dedans en dehors:

î<» Une cavilé centrale restreinte renfermant quelques spermatozoïdes complètement développés, et restant de la génération précédente;

'2° Une membran limitante avec noyaux aplatis; 3° Une couche de deutospermatoblastes dont les uns externes ont des noyaux dont la nucléine s'est portée toute vers un côté de la membrane nucléa^'re,dort les moyens présentent la forme à noyau diffus, avec giain nucléole central, et dont les internes présentent une partie massive très réfringente et très colorée, entourée d'une zone mince faiblement colorée.

L"état de la 'couche externe résulte peut-être de l'action un peu brutale du fixateur.

La couche interne paraît plus avancée que la couche externe Peut-être même la vacuole céphalique y a-l-elle déjà paru. Mais je n"ai pu l'apercevoir;

4° Une membrane qui limite extérieurement la couche 3° et qui renferme des noyaux petits et discoïdes.

5° Une masse lenticulaii-e ccncavo-convexe occupée tout entière par des noyaux germes des diverses dimensions plongés dans un protoplasme commun granuleux. Quelqces-uns de ces noyaux sont devenus gros, arrondis et relativement clairs, et sont sur le point d'acquérir une zone protoplasmique pour devenir de jeunes protospermatoblastes. Les noyaux périphériques sont encore petits et aplatis, et en voie de division et de multiplication. C'est là un nid de germes qui fournira la génération qui succédera à la couche 3^.

6° Une membrane limitante externe renfermant de très petits noyaux plats qui paraissent quiescents.

Cette préparation ofî're un très vif intéi et, par la série de générations qu'elle renferme, et par l'apparence très nette et la conservation des cloisons membraneuses qui les séparent.

FiG. 6. — Protospermatoblaste de même Majn montrant la structure granuleuse de la nucléine, et la division du cytoplasme en régions séparées par de fines cloisons. D D de Zeiss. Le diamètre de ces protospermatoblastes est de Û^^jOlV, tandis que celui dos deutospermatoblastes de lafig. 5estde0°"",01.

FiG. 7. - Pagurus strialus du 20 no\cmhve. Solulïon de sublimé et acide acétique. Coloration par le carmin borate.

t-PEli.MA!Or,ENÉSI-; CHEZ LKS CULSTAG^S DÉL;AI'UbL;s. 341

Coupe portant sur la portion élargie du canal déférent. En dehors, membrane conjonctive avec ses noyaux aplatis. En dedans, couche épithéliale passant peu à peu vers la gauche

à l'état de membrane conjonctive identique à la membrane

externe.

FiG. 8. — Aslacus fluvialilis dn 3 novembre. Solution satui-ée de sublimé mêlée à 20 % d'acide acétique glacial. Série des alcools. Carmin borate. Coupes dans le baume.

Portion de la partie superficielle d'un acinus pour montrer les relations des éléments. On n'a dessiné que les éléments adhérents à la paroi.

Deux protospermaloblastes jeunes, dont les noyaux mesurent 0'"",016, et présentent un réseau à grains fins et délicats de nucléine. Le cytoplasme, hyalin et très mince, commence à acquérir^:; par places de petits disques lenticulaires de fines granulations qui se colorent légèrement.

Les noyaux germes sont nombreux, car les spermatoblastes sont rares. Ils se multiplient par division directe, et se colorent viven:!ent.

La membrane de l'acinus renferme sur un point un gros noyau avec clivage prononcé, et sur un autre point deux noyaux plats et discoïdes résultant d'une division directe.

FiG. 9. — kwiiQ Aslacus fluvialilis û.y\ 1*'' septembre pris en liberté. Solution aqueuse saturéede sublimé. Alcools. Carmin borate. Coupes dans le baume.

Coupe prise dans un testicule où le développement des spermatozoïdes est relativement jdus avancé que chez les autres animaux qui ont été pris et préparés le même jour. Tous les acini et toutes les cavités testiculaires sont remplie de spermatozoïdes bien développés, tandis que chez d'autres Aslacus les spermatozoïdes étaient^encore imparfaits. Je n'ai repro* duit que 4 spermatozoïdes, pour ne pas surcharger inulilemeutla figure. L'intérêt de^la préparation se trouve d'ailleuis dans les spermatoblastes.

Ces protospermatoblastes constituent une rangée unique située sur la membi-ano de l'acinus. Leur dimension et leurconstilutionMlémonlrcnl ^qu'ils sont jeunes. Leurs noyaux ont en moyenne 0'""',02 de diamètre. Ils sont parcourus par un réseau à grandes mailles à grains fins. En out)-e leur corps protoplasmique est très mince et hyalin.

6~l'C A. eABATIliR.

Ce sont là des canictèrcs de jeunesse chez les protospermalob'.asles.

Mais ce qu'ils présentent de très intéressant, c'est qu'ils so multiplient par division directe et clivage. On voit, en eet e\ des noyaux qui viennent de se cliver I. a couche de protoplasme qu'ils possèdent sur les faces de clivage est encore très mince.

Je suis disposé à penser que ces protospermatoblastes jeunes, mais lardil's.se multipliant ainsi en une couche unique et par division directe, proviennent des nids de l'arrière-saisoii représentés PI. I, fîg. 4, 9, 13, et observés sur d'autres Astacus un peu moins avancés, également le [°'' septembre de la même année.

La membrane de lacinus renferme des noyaux dont quelquesuns grossissent et se divisent pour constituer des nids.

FiG. 10 et 11. — Protospermatoblastes de la même préparation, présentant une segmentation directe à surface oblique pour le premier, et perpendiculaire pour le second.

FiG. 12. — Pagurus striatus du 6 novembre.

Testicule traité par la solution aqueuse saturée de subiimé, additionnée de 20 % d'acide acétique glacial. Alcools. Carmin borate. Coupes dans le baume.

Diverticuledulube testiculaire présentant de dedans en dehors:

1" Une masse de protospermatoblastes volumineux mesurant environ 0^^,02, avec des noyaux de 0™°>,01. Le cytoplasme est volumineux et très granuleux, se colorant assez facilement. Les noyaux ont la nucléine à l'état irradié, c'est-à-dire dans une phase précédant la caryocinèse. Ces cellules volumineuses occupent la plus grande partie de l'acinus. Toutes sont au même degré de développement;

2° Une masse lenticulaire concavo-convexe de protospermatoblastes plus jeunes. Les cellules sont moins volumineuses, le cytoplasme est bien moins épais ; il est clair, à grains très fins, et très peu colorable. Les noyaux présentent la nucléine à l'état de grains de dimensions variées, et dont quelques-uns assez gros forment des nucléoles nucléiniens. Dans aucune de ces cellules, pas plus que dans celles de la niasse 1°, je n'ai aperru de Nebenkern.

Entre la couche 1° et 2" il existe une membrane que l'on difctingue surtout au voisinage des parois de l'acinus ;

3° La membrane propre de l'acinus renfermant des noyaux déjcà volumineux, se multipliant pour former un nid de germes qui jouera, par rapport à la masse 2°, le môme rôle que cette dernière a joué vis-à-vis de la masse 1°, c'est-àdire qu'elle la poussera en grossissant vers la base du diverticule, et la remplacera.

Ces noyaux son t situés en tre deux membranes de clivage visibles par place et surtout au niveau du gros noyau qui se trouve à gauche. Ces noyaux constituent des germes et représentent la troisième génération des éléments contenus dans l'acinus.

Je dois faire remai-quer que toutes les cellules de la couche 1° présentaient la même phase, et que par conséquent aucune ne pouvait être considérée comme stationnaire et comme la source do la future régénération. Je ne pense pas non plus que vom Rath puisse songer à considérer la couche 2° comme représentant ses cellules stationnaires, car elles sont trop nombreuses; d'après vom Rath, en eûet, ce rôle serait dévolu à quelques cellules rares et placées çà et là, dispersées.

FiG. 13.— Pagurus slriatus. Portion provenant du même testicule que la fig. 12. Coupe prise sur les bords d'un acinus pour montrer l'état des cellules spermatoblastes dans lequel la nucléine devenue rare a presque disparu du centre des noyaux et s'est portée vers la périphérie. Le cytoplasme est rempli de granulations très nombreuses et assez colorables, qui masquent les contours du noyau, (^et état se retrouve assez souvent. La membrane épaisse renferme de petits noyaux plats et discoïdes.

FiG. 14. — Astacus fluviatilis du mois de novembre. Testicule fixé d'abord dans la liqueur de Ripartet Petit; puis dans la solution aqueuse saturée de sublimé additionnée de 5 7o d'acide acétique glacial. Alcools Double coloration obtenue par une première immersion dans le carmin borate et par une seconde dans le carmin d'indigo. La nucléine est très colorée en rose ; tout le reste de la préparation est d'une belle couleur bleue. 1" A l'intérieur de l'acinus quelques protospermatoblastes encore jeunes. Celui de droite est très jeune. Son noyau, relativemcntpetit,a toutàfaitl'aspectdes gros noyaux germes placés dans le voisinage, et son cytoplasme est très peu important et clair. Ces spermatoblastes sont entourés de protoplasme caduc granuleux et en lambeaux déchiquetés.

34 i A. SABATIER

2" Au-dessous, un nid de germes composé de quatre gros noyaux germes plongés dans nu protoplasme commun et séparés de la masse inleine pai une mcmbi'ane que l'absence de cellules voisines et une belle coloration bhue rendent on ne peut plus évidente. Il y a là une lentille très nette, dans laquelle ne figure aucun spermatcblaste, et qui est bien délimitée par des membranes de clivage.

3° Au dehors est la membrane propre de l'aciuus renfermant des noyaux se multipliant amitotiquement pour former de nouveaux nids de blasième contenus entre des membranes ce clivage. A droite le nid renferme déjà quatre noyaux.

FiG. 15. — Astacus fîuviatilis du 2 uoyemhve. Testicule fixé d'abord dans la liqueur de Ripart et Petit, puis dans la solution de sublimé additionnée de 10 % d'acide acétique glacial. Coloration surcoupes par l'hématoxyline de Delafield. Coupes dans le baume.

Jeune acinus en train de se former, dans la cavité duquel l'on voit trois protospermaloblastes récemment formés mais d'âges et dedimensioiisuu peu dilTérents, plus des groupes de gros noyaux de blastème deitiués à former des protospermatoblasles. Toutes ces parties sont plongées dans du protoplasme caduc dans lequel on distingue quelques fins Iraclus dus à l'apparition de quelques vacuoles. L'aciuus parait provenir de deux nids de blasième voisins, car il est étranglé, et au niveau de Tétranglemcnt se tiouveune série do noyaux qui sont accompagnés en haut par des vestiges de membrane. Il résultera du développement de ces parties la formation de deux acinus convergents.

Chacun d'eux est surmonté et gonflé d'ailleurs d'un nid de gernaes nettement limité par deux membranes de clivage, l'une interne et l'autre externe.

FiG. 16. — Portion du même testicule que la fîg. 15. Même préparation .

Portion d'acinus renfermant à l'intérieur et contre la paroi seulement des jirotospeimatoblastes jeunes et des germes entremêlés, et plongés dans du protoplasme caduc qui occupe le centre de l'aciuus. La membrane contient des noyaux déjà voUnnineux dont l'un viontjde se diviser, et qui par leur accroissement de volume ont accentué le clivage de la membrane.

SPERM ATOIÎKNÈSE CHKZ LES CRUSTACÉS DÉCAPODES. 34)

FiG 17. — Même préparation que la précédente. Enveloppe générale du testicule avec ses noyaux rares, et aplatis dont l'un est en train de se diviser.

FiG. 18. — Ménae préparation. Membrane propre d'un acinus avec

ses noyaux multiples et fréquents.

FiG. 19 et 20. — Même préparation. Noyaux venant de se diviser. FiG. 21. — Aslacvs du 3 novembre. Solution saturée de sublimé, alcools, carmin bor.ilé. Coupes dans le baume.

Portion d'acinus présentant à l'intérieur de la membrane une série de protospermatoblastes encore jeunes à corps protoplasmique très mince et pâle transparent. Le noyau avec réticulum nucléinien à nœuds ; noyaux germes situés entre les pi'otospermatoblastes. Le centre de l'acinus est occupé par du protoplasme caduc devenu granuleux et vacuolaire.

La membrane renferme une série de noyaux inégalement développés, et destinés à constituer un nid de germes. La membrane interne de clivage se voit fort bien par places. FiG. 22. — Homarus vulgaris du 10 janvier. Testicule traité par la solution de sublimé et acide acétique glacial à 20 7°- Alcools; carmin borate. Coupes dans le baume.

Diverticule testicuiaire sur lequel se forme un nouveau diverticule par le développement d'un nid de germes. Dans le diverticule primitif, spcrmaLoblastes en voie de cinèse. Un seul plus jeune est encore quiescent.

Dans le diverticule lécent qui forme comme une verrue ou excroissance à la surface supérieure on voit des éléments différents noyés dans une masse commune de protoplasme caduc granuleux. Des éléments qui y sont renfermés les uns plus nombreux sont des noyaux germes déjà arrondis et volumineux. Leur nucléine est disposée sous forme de réseau à petits nœuds, exactement comme dans le noyau des jeunes spermaloblastes.

A droite et en baut un de ces noyaux plus volumineux est exactement constitué comme celui des jeunes et petits spermatoblastes de même groupe.

La figure ne rend pas assez fidèlement cette ressemblance qui était très grande sur la préparation. Eu bas, quelques spermaloblastes dont quelques-uns très jeunes à petits noyaux réticulés, et à protoplasme raiuce et liyalin.

346 A. SAIiATIEn.

En haut, deux spermatoblastes c, rf, à noyaux volumineux, à nncléine irradiée, vl semblant par conséquent se préparera Ja cinèse.

On voit, donc que dans ce nid, destiné à foiu'nir iin diverticule de nouvelle formation, les éléments se trouvent à des degrés assez différents de développement.

Entre les spermatoblastes en cinèse et le diverticule nouveau se voit une cloison très marquée, et dans laquelle des noyaux ont grossi, se sont divisés et semblent vouloii- fournir de nouveaux germes. La membrane ou cloison s'est fortement clivée au niveau des noyaux.

En haut de la cloison est un noyau dans lequel s'est fait une division multiple par clivage simultané.

Enfin la meozbrane qui recouvre le nouveau diverticule renferme au niveau du sommet une réunion de noyaux a aplatis destinés à fournir un autre nid qui fera à son tour saillie sur le diverticule.

FiG. 23. — Hommnis vulgaris du 10 janvier.

Sublimé et acide acétique glacial. Alcools. Carmin borate.

Coupes dans le baume.

Portion de cul-de-sac ou diverticule testiculaire, montrant de dedans en dehors :

1° Une masse de protospermatoblastes, avec quelques gros noyaux germes ayant exactement la structure des noyaux des protospermatoblastes. Le cytoplasme de ces derniers renferme souvent un ou plusieurs Nebenkern ; mais il est surtout remarquable en ce qu'il manifeste nettement sa structure globuleuse. Ces globules sont à peu près sphél'iques et renferment de nombreux grains qui se colorent assez bien. Quelques globules sont clairs, transparents, incolores, d'apparence liquide, et possèdent une sorte de nucléole coloré qui est formé d'une agrégation de grains assez chromophiles.Ges vésicules claires sont assez fréquentes dans la préparation ;

2" Deux nids de germes déjà gros et limités par une membrane de clivage interne sans noyaux, et une externe avec noyaux plats et discoïdes. Ces deux membranes proviennent du clivage de la membrane propre de Tacinus. Les noyaux germes sont plongés dans un protoplasme clair à fins giauules qui n'a pas été dessiné.

spermatoCtEnèse chez les cru.-tacés décapodes. '547

3û L'enveloppe générale du testicule ou enveloppe externe avec noyaux aplatis.

Fkt. '24. — Pagurus striatus du 30 janvier. Sublimé et acide acétique. Alcools. Carmin borate. Coupes dans le baume.

Portion du tube tesliculaire dont la cavité est remplie par des protospermatoblasies dont la plupart ont un noyau à nucléir.c irradiée, et se préparent à entrer dans les phases de la cinèse. Leur protoplasme est volumineux et d'aspect globuleux. Un seul a été complètement dessiné; les autres ne sont qu'indiqués. Parmi ces spermatoblastes ne se trouve plus un seul noyau germe, parce que tous se sont transformés en spermatoblastes.

La paroi propre de l'acinus est intéressante parce qu'elle présente un groupe de clivages juxtaposés renfermant des noyaux germes de dimensions variées, mais croissant de bas en haut. Daus la cavité supérieure de clivage qui est représentée béante dans la figure se trouvaient deux gros noyaux sphériques qui avaient exactement l'aspect dos noyaux des jeunes spermatoblastes. Il y a donc là un groupe de nids de germes, ou un nid subdivisé par suite de clivages partiels et localisés de la membrane.

Fiti. "25. — Pagurus strintus du 9 avril. Sublimé et acide acétique. Alcools. Carmin aluné. Coupes dans le baume.

Portion de paroi d'un acinus rempli de deutospermatoblastes à couche protoplasraique assez mince, et dont les noyaux volumineux renferment la nucléine à l'état d'étoiles irrégulières de grains chromophiles. Les limites du noyau sont très peu marquées. Ces cellules se préparent à la cinèse.

La membrane propre renferme des noyaux en division directe encore très petits.

FiG. 26. — Pagurus striatus du 20 mars. Mêmes réactifs. Coupes dans la glycérine.

Un gros protospermatoblaste appliqué contre des nids partiels séparés par des cloisons, provenant de clivages partiels et localisés de la paroi, semblables à ceux de la fig. 24.

Planche IIL

FiG. i. — Pagurus striatus du 15 janvier. Testicule fixé dans une solution de bichromate d'ammoniaque à 2% pendant dix jours; puis dans la série des alcools. Carmin borate. Coupes dans le baume.

348 A. SAHATlEll.

Portion de diverlicule dont la cavité est remplie par des prol:)sperraaloblastes à nucléine en étoile avec nucléole central. Liuiilcs du noyau à peino percepliLles. Protoplasme granulé, se colorant passablement. Eu dehors, nids de gros noyaux séparés des spermatoblasles par une très fine membrane do clivage

Membrane propre du diverticule avec petits noyaux plais se divisant.

FiG. 2. — Un protospermatoblasle du même testicule vu sur une

coupe plus fine au 0°"",0I.

FiG. 3. — Un protospermatoblasle du même testicule isolé par dissociation FiG. 4. — Paginons slriatusdu 20 novembre. Solution de sublimé et acide acétique glacial à 20 7o- Carmin borate, (loupes dans le baume. Objectif F de Zeiss.

Portion de diverlicule dont la cavité centrale est occupée par des spermatozoïdes près de leur développement parfait.

Endehorsest un groupe lenticulaire concavo-convexe de spermatoblasles chez lesquels la membrane nucléaire a disparu, et dont la nucléine s'est réunie en disques ou masses aplaties à bords étoiles. Cet état est uue phase iphase de la plaque équatoriale) de l'une des formes inférieures de la caryocinèse. La limite entre la masse des spermatozoïdes et cette couche à spermatoblasles est très nette et bien tranchée.

En bas l'angle du croissant formé par celte couche est soulevé par un nid de noyaux germes déjà volumineux et ovoïdes ; ce nid dont on ne voit qu'un fragment est sépai-é de la couche précédente par une délicate membrane de clivage. Le protoplasme au sein duquel sont ces noyaux est un protoplasme commun et indivis, et c'est à torique le graveur s'est permis de représenter son bord déchiré, comme arrondi autour des noyaux.

La membrane propre du diverticule contient des noyaux dont quelques-uns se sont divisés et ont grossi pour former un nid de germes pour l'avenir.

Ce diverticule renferme donc quatre générations différentes et successives d'éléments spermatogènes, qui se superposent en allant de dedans en dehors, du plus âgé au plus jeune. FiG. 5. — Pagurus strialus de la fig. 4. Objectif D de Zeiss.

Portion de diverticule rempli de prolospermatoblastes à noyau tendant vers la forme à nucléine irradiée.

SPEIVMATOGENÈS-: CHEZ LES CRUSTACKS .DÉCAPODES. ."5 49

L'enveloppe du diverlioule contoaanL des noyaux germos s'est déchirée pondantles manipulations, et un nid de germes s'est en partie détaché montrant nettement les deux membranes de clivage, l'une interne et l'autre externe. En B se voit un nid semblable détaché de la surface du diverticulo voisin.

Fia. 6. — Pa;yif/7(S5i/'ùifas do la fig. 4. Jeuiie nid de germes très jeu ■ nés et petits, avec ses deux membranes de clivage et deux spermatoblastes dont le contour seul a été dessiné.

FiG. 7. — Pagurm slrialus du 20 novembre. Solution de sublimé et acide acétique glacial à^20 7o- Carmin borate. Coupes dans le baume, fragment du tube testiculaire dont la grande cavité est occupée par : l" des deutospermatoblastes de la première génération en voie de karyocinèse à plaque massive et sans fuseau.

2'^ En dehors on voit l'angle^d'un nid de germes dont quelquesuns sont encore petits, mais dont la plupart ont acquis les dimensions et la structure des noyaux de jeunes protospermatoblastes. Ils sont plongés dans un protoplasme commun granuleux, dans lequel on distingue quelquesstries unes dues àla compi-ession et au feutrage du réticulum du protoplasme commun, mais qui ne représentent en rien des limites de corps cellulaires. Ces derniers n'ont pas encore paru.

Ce nid est visiblement formé dans une cavité de clivage de !a membrane propre, cavité comprise entre un feuillet interne sans noyaux et très délicat, et un feuillet externe avec noyaux el très petites cavités de clivage.

En bas on voit l'angle d'une autre grande cavité de clivage.

Enfin en dehors est l'enveloppe générale du testicule avec noyaux rares.

FiG. 8. — Carcinus mœnas du 18 décembre. Traitement par la liqueur de Millier, et les alcools. Coloration par l'hématoxyline de Delaûeld. Coupes dans la glycérine.

Trois diverticules testiculaires voisins et une portion de tube sécréteur. Le diverticule médian seul a été entièrement dessiné. Les autres ne le sont que partiellement.

Chacun des acini a sa cavité occupée par deux couches superposées et concentriques.

{" Une couche ou masse interne composée entièrement de spermatozoïdes presque entièrement développés.

2° Une couche externe en forme de lentille concave- convexe

350 A. SABATlEn.

qui coiffe la couche 1°, et qui est enlièreraent composée de prolospermatoblasles jeunes et quiescents, dans lesquels le noya:i a la nucléine à l'élat granuleux, et dont le protoplasme assez clair est nelteiuent divisé en sphérules claires. Eiitre les deux couciies 1° et 2" se trouve toujours une membrane très nette dans laquelle existent ou n'existent pas des noyaux. Dans le cas artuel la membrane de l'acinus médian contenait plusieurs noyaux aplatis. C'est évidemment une membrane résultant du clivage de renvelop[je propre de l'acinus. Cette enveloppe est restée comme membrane externe et contient des noyaux identiques à ceux de la membrane interne.

L'acinus de droite se montre comme un diverticule du tube excréteur a qui est dessiné avec son épithélium,et des spermatozoïdes devenus libres qui sont situés dans le canal. L'épithélium n'existe qu'à gauche, la face opposée n'est reprrsentée que par une membrane de clivage derrière laquelle est la masse des spermatozoïdes. Cette figure peut s'interpréter comme un acinus développé sur un point du pourtour du tube tosticulaire primitif.

YiQ 9. — Deuxprotospermatoblastesdela figure précédente, destinés à bien marquer les détails de structure. Diamètre moyen 0™°',009. Diamètre des spermatozoïdes 0'""\004.

FiG. 10. — Astacus dn 12 juillet.

Traitement par la liqueur chromo-acéto-osmique de Flemming.

Coloration pour l'hématoxyline. Coupes dans la glycérine. Noyau à forme irradiée très nette. Cytoplasme très mince et clair, dans lequel se forme sur un point une accumulation ou protubérance de granules réfringents el colorés. Diamètre 0'"'",02.

FiG. 11. — Môme Astacus du 12 juillet.

Liqueur de Flemming. Dissociation dans la glycérine picro-

carminatée.

Protospermatoblaste dont le noyau présente la forme irradiée de la chromatiue, et dans le protoplasme clair duquel s'est dessinée une grosse sphère à grains passablement chromophiles, dont la fig. 10 représente probablement une phase de début.

Fig. 12. — Même Astacus, même dissociation.

Protospermatoblaste dont le noyau présente la forme irradiée

delachromaline. Autour de celui-ci 5e sont formées plusieurs accumulations ou protubérances analogues à celles de la fig. 10, etqoi deviendront probablement des sphérules proloplasmiques distinctes.

Fig. 13. — Même isfacws et même dissociation.

Protospermatoblasle dont les'sphérulesprotoplasmiquesse sont fort accrues, en même temps que leurs granulations ont en partie disparu. Noyau à chromatine irradiée. C'est par une erreur du graveur que la grosse sphérule de gauche a un double contour.

Fig. 14. — Même Astacus du 12 juillet. Mêmes réactifs. Coupes dans la glycérine.

Portion d'acinus dont la cavité est remplie de gros protosper-

matoblastes.

Les noyaux présentent la nucléine à l'état de gros grains séparés ou de nucléoles nucléiniens multiples cl isolés, indépendants. C'est à tort que le graveur a représenté la membrane nucléaire par un double contour.

Dans le protoplasme sont de grosses concrétions ou inclusions proloplasmiques granuleuses et se colorant assez bien quand elles sont petites ; mais demeurant claires et incolores en grossissant. La teinte de ces inclusions est trop accentuée sur la figure.

Membrane propre avec 2 gros noyaux venant de se diviser, situés dans une cavité de clivage, et pouvant devenir la source d'un nid futur de germes.

FiG. 15. — Pagurus striatus du 19 mars. Testicule traité par la solution aqueuse saturée de sublimé, additionnée de lOo/o d'acide acétique glacial; alcools. Carmin borate. Coupe dans le baume observée avec l'objet à immersion homogène 1/12 de Zeiss .

Portion de diverticule de formation nouvelle, renfermant des éléments cellulaires à des degrés divers de développement. La période active de l'organe est commencée; lesdiverticules sont remplis de protospermatoblastes qui sont en mitose ou se préparent à la mitose, ainsi que le prouve la fig. 16 prise sur le même animal. Mais la portion représentée ici fig. 15 correspond à une région d'un diverticule où les éléments sont le moins avancés. On y distingue en efîet: 1" Un gros noyau germe b ayant déjà acquis le volume et la

Structure des noyaux des spermatoblastes, mais n'ayant pas encore acquis une zone propre de protoplasme ou corps cellulaire.

2° Trois protospermaloblastes très jeunes c. c', c" sur lesquels vient de se former une couche très mince et hyaline de protoplasme.

3° Des protospermatoblastes cl, cl' cl" un peu plus; avancés avec protoplasme plus épais, et déjà granuleux. En cl' on observe un petit Nebenkern.

4° Enfin un grand spermatoblaste e, à grand corps protoplasmique réticulé et granuleux. Son noyau, dont la membrane a été exagérée sur la figure, paraît représenter une plaque équatoriale vuedeface.

Tous ces éléments sont plongés dans un protoplasme caduc très abondant et granuleux.

Enfin on trouve près de la paroi une série de noyaux aplatis aa,a que je considère comme. un nid de germes [en voie de formation. J'ai cependant soupçonné, plutôt que nettement observé, la membrane interne de clivage qui les sépare des éléments plus avancés, de telle sorte qu'il se pourrait que ces noyaux ne fussent que des éléments moins avancés du diverticule.

Cette préparation montrait d'une manière remarquable les diverses phases de la transformation des noyaux germes en protospermatoblastes. FiG. 16. — Même Pagurus slriatus du 19 mars. Même préparation. Même coupe .

Portion du tube testiculaire remplie de gros protospermatoblastes à noyaux irradiés , c'est-à-dire se préparant à la cinèse, avec quelques rares noyaux germes attardés et intercalés entre les grandes cellules.

Membrane propre de l'acinus détachée pendant les manipulations et montrant en b deux noyaux aplatis venant de se séparer, et en a des noyaux en division par voie de clivage et préparant un nid de germes. Ils sont plongés dans un protoplasme indivis, et sont compris entre deux membranes de clivage que l'isolement de la membrane propre de l'acinus rend très évidentes.

FiG. 17. — Astacus du 3 novembre. Testicule fixé par la solution aqueuse saturée de sublimé, additionnée de 207o d'acide acétique glaci.il. Alcools. Coloration des coupes par le carmin

SPERMATOGENÈSE CHEZ LES CRUSTACÉS DÉCA.PODSS. 353

borate. Préparation étudiée avec l'objectif à immersion - homogène 1/16 de pouce do Leitz.

Coupe comprenant toute l'étendue d'un tube testicnlaire A et une portion d'un tube voisin B, ou du même tube recourbé. Tube A. — Ce tube est composé des parois membraneuses et de l'épithélium interne.

Les parois membraneuses se composent de deux parties : 1° La partie interne ou paroi propre, membrane propre du tube qui forme une lame continue sur laquelle repose directement l'épithélium ; 2° La partie périphérique composée de membranes et de rubans reliés par des Iraclus à la partie interne et délimitant des cavités, des aréoles qui communiquent entre elles et constituent une sorte de tissu spongieux et caverneux. Cette partie représente plus directement l'enveloppe générale du tube tcsticulaire et les tractus qui la relient h la membrane propre. Les mailles de ce tissu aréolaire sont, les unes libres et occupées par le sang ou liquide nourricier. Les globules sanguins s'y engagent ; et c'est là un vrai réseau circulaloire. On voit en a dans une de ces mailles un globule sanguin dont le noyau est coloré très vivement, et qui est exactement semblable aux corpuscules du sang du même animal. D'autres vacuoles sont occupées par de beaux noyaux qui ont exactement les caractères des gros noyaux germes, et dont la plupart sont en voie de division directe par voie de pulvérisation de la nucléine et par clivage. Ce sont là pour la plupart des nids de germes destinés à croître, à grossir, à entrer en communication directe avec la cavité du tube, et à former de nouveaux acini à la surface du tube testiculairo primitif. L'épithélium est composé de belles cellules dont les noyaux ont exactement la structure des noyaux germes et des noyaux déjà vus dans les mailles de la paroi. Les corps protoplasmiques des cellules sont séparés par des limites extrêmement délicates. Ce protoplasme est d'ailleurs assez clairet finement granuleux. Sur une partie du pourtour les noyaux constituent une couche unique, et sont quiescents. Mais sur une moitié de ce pourtour ces noyaux se sont multipliés et semblent se préparer à de nouvelles divisions directes par pulvérisation de la nucléine. Aussi la couche épithéliale s'est-elle fortement épaissie dans cette partie, et la concavité de la membrane du tube est devenue plus accen-

ô)k A. SAIÎATinil.

tuée. Ea même temps des vacuoles claires naissent dans lo protoplasme des cellules. Ces vacuoles sont tout à fait semblables à celles du protoplasme caduc et notamment des PI. I , fig. 4, 6, 8; PI. lY. fig.l. Je les considère comme des signes et des avant-coureurs de la future dégénération du protoplasme des cellules épilhéliales transformées.

Ce point, où les noyaux se sont multipliés, va devenir l'origine d'un diverticule spermatogène qui fera saillie sur le pourtour du tube testiculaire. C'est un nid centrifuge pour ainsi dire.

En B on voit les parois composées des mêmes éléments qu'en A. Mais l'épithélium montre quelques détails très importants. En a on voit un noyau dans lequel la nucléine s'est pulvérisée, et où commence à se manifester une zone sombre transversale ou voie lactée qui va devenir le lieu du clivage. En b on voit un spermatoblaste très jeune, à beau noyau réticulé, et à couche protoplasmique très mince et hyaline, par conséquent très récente. On remarquera que le spermatoblaste est avec les deux noyaux qui lavoisinent placé dans une masse indivise de protoplasme. Il est probable qu'ils proviennent tous les trois de la division directe du noyau d'une cellule épithéliale, dont le corps protoplasmique qui est resté indivis constituera le protoplasme commun et caduc.

Cette figure démontre nettement la formation des futurs acini sur le pourtour du tube testiculaire, soit par multiplication et grossissement des noyaux interpariétaux, soit par la multiplication et le grossissement des noyaux de l'épithélium interne. Ce rôle commun, aussi bien que la structure identique de ces deux groupes de noyaux, établit entre eux des rapports étroits de signification et de nature.

Fig. 18. — Même âstacus, même préparation, observée avec l'objectif

1/12 de pouce à immersion homogène de Leitz. Coupe oblique d'un tube testiculaire voisine de la coupe

fig. IT.

La constitution des parois membraneuses est passible des mêmes

remarques que pour la fig. 17. lly a plusieurs nids de noyaux

germes en voie de division et multiplication par pulvérisation

et clivage.

De ces nids les uns sont centrifuges c, d, h, /", e. L'un d'eux est

centripète^, la membrane de clivage in terne étant plus mince

et moins résistante que rexterne.

Dans le nid c, quelques noyaux sont devenus très volumineux, et ressemblent très exactement à ceux des protospermaloblastes.

Dans l'époisscnr de la membrane propre se voient des coupes de fibiTs musculaires m, m.

L'éi)ilhélium ùllrc quelques points très remarquables. En a se trouve un gros protospermaloblaste h corps protoplasmique déjà assez gros, et un peu granuleux. Les noyaux des cellules voisines se sont multipliés; et la se trouve l'origine d'un acinus qui commence à saillir sur le tube testiculaire.

Dans quelques cellules des parois planes les noyaux se divisent; et là se formeront de futures protubérances ou acini.

Mais celte grande multiplication des noyaux a acquis une grande intensité vers l'extrémité droite delà coupe. On y trouve, à la base et contre la membrane, des noyaux trèsseri\'s et pressés par une multiplication active, do jeunes ppermatoblastes b', qui semblent se diviser amitoliquement comme les jeunes protospermatoblastes delà PI. II, fîg. 9, 10, 1 1, et qui n'ont encore qu'un corps protoplasmiiue très mince et hyalin ; et enfin deux éléments b dont l'un est un gros noyau germe sans protoplasme et l'autre un gros noyau de structure identique entouré d'une couche hyaline très mince. Cette dernière figure est bien propre à montrer le passage des noyaux germes aux protospermatoblastes.

Ces derniers éléments sont plongés dans un protoplasme commun ou caduc, et l'on voit çà et là des vacuoles précurseurs de la dégénérescence du protoplasme caduc. FiG. 19. — Même Astacus du 3 novembre,! même préparation. Coupes dans le baume observées avec l'objectif à immersion homogène 1/12 de pouce de Zeiss.

Belle coupe portant sur deux acini voisins d'origine récente. La coupe, probablement perpendiculaire à l'axe des acini et parallèle à l'axe du tube testiculaire n'a pas atteint ce dernier.

L'acinus B est le plus jeune. Il faut considérer en lui les parois et le contenu. On peut dire de ses parois ce que nous avons dit des parois des coupes fig, 17 et fig. 18, sauf qu'elles sont moins riches en lames conjonctives. Les lacunes des parois présentent de beaux noyaux germes b'b'Vh\ à nucléine pulvérisée, et se divisant assez activement. Ce sont des nids centrifuges, origine de futurs acini.

Dans la (îivilé de rr.ciiits B, se liouvci'l de forts beaux noyaux plongés dans un prc toplasme granuleux indivis. Ces noyaux montrent tous de forts beaux phénomènes de division par pulvciisalion de la nucléine, voie lactée e»; clivage. Dans la coupe de cet acinvis on n'obseive pas un seul protospermaloblaste. Il ne païaîl y avoir que dos i;oyaux germes en division active.

L'acinus A prc'geiile un élat plus avancé. Dans ses parois sont deux nids centrifuges b, b. Dans la cavité on remarque des noyaux germes se divisant par voie de pulvérisation et de clivage; les nos arrondis, volumineux, à nucléine en réseau ; les autres identiques à ces ^derniers, mais entourés d'une couche très mince de protoplasme hyalin, et par conséquent parvenus à la valeur de protospeimatoblastes.

Enfin dans le protoplasme indivis où sont plongés ces deux éléments, se^ sont formées des vacuoles claires qui sont le prélude du passage de ce protoplasme à l'état de protoplasme caduc.

L'examen des éléments des deux acini me paraît éminemment propre à établir que les protospermatobhistes proviennent bien dei^la^transformation des noyaux germes.

Entre les deux acini est un tractus membraneux que les progrès du développement et l'accroissement des deux masses cellulaires feront disparaître en tout ou en partie.

FiG. îO. — Pagwus sirialus du 19 mars.

Testicule traité parle mélange de solution de sublimé et d'acide acétique à 20 %• Coloration par le carmin borate. Observé . avec l'objectif apochromatique 8.0 de Zeiss. Dessiné à la

chambre claire.

Coupe [longitudinale de la paroi d'un tube tosticulaire, montrant la formation et la disposition des nids à forme allongée f et à grande surface de noyaux inlerpariétaux. Le tube est

rempli de spermatozoïdes déjà bien développés. La paroi présente^ un épaississement lenticulaire de grande ■; étendue croissant de gauche à droite, destiné à fournir non

: un acinus, mais une vaste saillie plate et surbaissée.

On voit le passage progressif de gauche à droite des noyaux aplatis de la paroi aux noyaux plus arrondis du blastèmc de romplacenrcnt.etleur multiplication d'abord en ligne, ensuite suivant l'épaisseur. Ces noyaux présentent tous la nucléine

spermatoptEnèse chez les crustacés, décapodes. 357

à l'état de pulvérisation. Ils sont donc en train de se diviser activement. Ils sont plongés dans une masse indivise de protoplasme comprise entre deux membranes de clivage, lune interne et Tauli-e externe.

FiG. 2'. — Parjurus sln'dtus du 10 juin. Solution saturée do sublimé et acide acétique glacial à 10 %. Alcools. Carmin aluné. Gonpcs dans le baume, observées avec robjoclif apochromalique 4.0 de Zeiss et l'oculaire compensateur 8. Coupe dessinée à la cliambre claire, et montrant un diverticule du tube testiculaire dont la cavité est remplie de spermatoblastes dont les noyaux clairs ont la nucléine sous forme de grains situés surtout vers la périphérie. Le fond du diverticule est formé par une lentille très concave formant un beau nid de germes plongés dans un protoplasme indivis très granuleux. Ce nid est compris entre deux membranes de clivage, dont l'interne est très nettement mise en évidence par cette circonstance qu'au point a l'effet des réactifs ou des manipulations en a détaché le protoplasme indivis du nid. Il y a Là une fente claire qui sépare les deux éléments et jend manifeste leur distinction. FiG. 22. — Astacus fluvialilis du 23 août, pris en liberté. Testicule traité par la solution saturée de sublimé additionné de 10 °/o d'acide acétique glacial. Alcools. Coupes colorées à l'hématoxyline de Delafield, et observées avec l'objectif apochromatique 4.0 de Zeiss.

Portion d'acinus montrant deux des protospermatoblasîes qui en occupent une pai'tie ; et surtout deux clivages superposés de la membrane propre de l'acinus, ayant produit des cavités dans lesquelles les noyaux se multiplient pour former des générations successives d'éléments spermalogènes. Il y a double délamination de la membrane propre. Les noyaux des spe.'-matoblastes présentent leur uucléine dans le même état que ceux de la fig. 21.

Planche IV.

Fig 1. — A siacus fluvialUis du. 3 novembre. Testicule traité par la solution aqueuse saturée de sublimé additionnée d'acide acéliiiuo à 20 %• Alcools. Carmin borate. Coupes dans le baume. Dessin à la chambre claire. Observation pour les détails avec l'objectif à immersion homogène I/IG de pouce de Leitz.

Coupe d'un aciniis dans lequel on voit de dehors en dedans :

1" La membrane propre avec des noyaux aplatis dont l'un est en voie de clivage oblique ;

2° Une couche composée I"de protospermatoblasfes récemment formés, avec réseaujdélicat de nucléine à nœuds granuleux, et avec corps proloplasmique tiès mince et hyalin, 2° de germes déjà volumineux dont quelques-uns sont en voie de clivage et dont l'un, volumineux et ovoïde, possède très exactement la slrnclui'e des noyaux des jeunes protospermatoblastes. Tout fait présumer que ce noyau était sur le point d'acquérir un mince corps proloplasmique hyalin et de devenir un vrai spermatoblaste ;

3° Tous ces éléments cellulaires sont plongés dans une masse commune de protoplasme caduc, très granuleux, dont la dégénérescence se manifeste par de nombreuses vacuoles claires,

FiG. 2. — Astacus fluviatilis du 20 octobre, pris en liberlc. Fixation par la liqueur chromo-acéto-osmique de Flemming. Alcools. Coloration par l'hémaloxyline de Delafield. Coupes dans le baume. Immersion homogène 1/16 de Leitz. Portion de tube testiculaire,dont la paroi conjonctive épaisse est tapissée par des cellules semblables à celles des fîg. 17 et 18 de la'Pl. HT. Chacune des trois cellules de droite possède près du 'noyau une 'vacuole occupée en partie par des granulations .brunes, et un liquide peu réfringent. On peut considérer ces vacuoles comme des symptômes de dégénérescence du protoplasme. La cellule de gauche a son noyau entouré d'une zone claire, déjà épaisse vers la partie libre de la cellule, et qui [m'a paru être un corps proloplasmique par sa constitution finement réticulée. Dans l'intérieur du tube se trouvent des spermatozoïdes enfermés dans leur membrane cellulaire et plongés au milieu d'un liquide hyalin, réfringent, prcsenlant quelques fines granulations, et ressemblant au liquide chilineux qui forme les spermatophore» des Crustacés décapodes.

FiG. 3. — /I67acw5//umaîj7i5 du 3 novembre. Sublimé et acide acétique à 20 %• Alcools. (Coloration par le carmin borate. Coupes dans le baume. Objectif à immersion homogène 1/16 de Loilz. Coupe portant sur une extrémité d'acinus sur laquelle s'est développée une série superposée de nids de germes.

Dans racinus on dislingue une. paroi vacuolaiic épaisse renfermant dans ses diverses cavités de clivage des noyaux à nucléine plus ou moins pulvérisée, et en voie do clivage. Sur l'un d'eux placé contre la partie inférieure de la lumière de l'acinus on distingue fort bien une voie lactée granuleuse sombre, sur laquelle va se faire la division. Dans la cavité de Taciuus sont trois germes, dont deux ont acquis des dimeusions considérables, et sont devenus ovoïdes ou sphériques. et ne difîerent absolument en rien des noyaux des protospermaloblastes jeuues. La zone protoplasmique mince et hyaline leur fait seule défaut. Ces éléments sont plongés dans un protoplasme caduc à structure aréolaire, avec grains sur le parcours des filaments très délicats du réseau .

La. protubérance inférieure de nouvelle formation présente deux nids superposés, l'un plus ancien et plus volumineux, et l'autre petit et récent. Le premier renferme de fort beaux noyaux germes, dont la plupart ont leur nucléine pulvérisée et quelques-uns avec voie lactée. Ils sont plougés dans un protoplasme commun, à réseau délicat, comme dans l'acinus.

Le nid le plus jeune est représenté par deux noyaux qui sont encore adhérents l'un à l'autre, leur clivage n'étant pas terminé. Ce nid entouré de membranes de clivage se continue très nettement avec la membrane propre de l'acinus, qui possède un noyau situé dans une cavité discoïde, se continuant très visiblement avec la cavité de clivage voisine qui renferme les deux noyaux ou germes.

FiG. 4. — Astacus fluvialilis du 23 août pris en liberté. Solution saturée de sublimé et acide acétique glacial à 10 %• Alcools. Hématoxyline. Objectif apochromatique 4.0 de Zeiss. Portion de l'enveloppe propre d'un cul-de-sac, renfermant un noyau discoïde étendu, et présentant une cavité de clivage d'un grand diamètre et remplie de protoplasme granuleux. En dedans delà membrane se trouve un gros noyau germe en voie de division par pulvérisation de la nucléine.

FiG. 5 et 6. — Même Astacus et même préparation. Membranes de deux culs-de-.sac dont on n'a pas dessiné le contenu. Elles présentaient des clivages très étendus et des noyaux se multipliant pour former de futurs nids de germes.

FiG. 7. — Astacus fluviatilis d'octobre. Fixation par la liqueur de

Ripait et Petit. Gioupe d'acini de formes sphériqiies ou hémisphériques suspendu à un canal excféteur cylindrique, avec jeunes acini se formant au point oii commence ce dernier. Dessiné à la chamlre claire.

FiG. 8. — Pfl^!<rw5 5i?'/a^u5. Fixation par la liqueur de Ripart et Petit. Tube testiculaire dessiné à la chambre claire, avec ses sinuosités, et ses diverticulus peu saillants et parfois étendus et surbaisses.

FiG. 9. — Astacus fluviatilis du 3 iioveuibre. Solution de sublimé et acide acétique à 20 %. Alcools. Carmin borate. Coupes dans le baume.

Coupe du canal déférent, comprenant de dehors en dedans :

1° La membrane coujonctivo-musculaire ;

2° L'épithélium cylindrique à longues cellules ;

3° La lumière du canal remplie par une masse hyaline et d'aspect glutineux, renfermant des spernialozoïdes.

Fjg. 10. — Pagurus slriatus du 18 mars. Fixation par la liqueurde Millier. Alcools. Coloration par riiémaloxyline. Coupes dans la glycérine.

Deutospermatoblaste dont la nucléine présente la forme pelotonnée (Spirème). Ohj.. F. de Zeiss. Diamètre de la cellule, G™'", 02; diamètre du noyau, 0°"°,0L

FiG. 11. — Ide7n à nucléine en gros grains disposés suivant des méridiens. Obj. F. de Zeiss. Diamètre de la cellule, 0""",017; diamètre du noyau, 0'°™,012.

FiG. 12. — Idem à nucléine granuleuse avec nucléole nucléiuien.

FiG. 13. — Astacus puvialilis du 21 septembre. Pris eu liberté. Liqueur de Millier. Alcools. Hématoxyline. Coupes dans la glycérine.

Protospermatoblastc en voie do caryocinèse. Beau fuseau, avec plaque équatoriale composée de séries parallèles de gros grains. Grosses sphérules granuleuses et légèrement colorées dans le cytoplasme.

FiG. 14. — Idem. Deux beaux protospermaloblastes à noyaux volumineux, avec nucléine sous forme de grains distribués en un réseau qui semble passer à la forme irradiée. Quelques sphérules aplaties, petites et colorées dans le cytoplasme, d'ailleurs peu abondant. Obj. F. de Zeiss. Diamètre des noyaux, 0""",02o.

SrEKMATOGHNÈSE CHLZ LES CUUSTACÉS DÉCAPODES. 361

FiG. 15. — i(((»i. Protospermatoblaste avec noyau à nuoléine irradii-e, et avec deux grosses sphérules cyloplasmiques. Diamètre du noyau, U™'°,018.

FiG. 16 et 17. — Pagurus callidus du 10 avril. Acide acétique à 5 «/... Vej't méthyle acétique: Dissociation.

Spermatoblaste à noyau massif et condensé, très coloré et très réfringent. Sphérules granuleuses dans le cyioplasrae. Obj F. de Zeiss. Diamètre de la cellule, 0'"'°,02.

FiG. 18. — Idem. Spermatoblaste à noyau dilaté et à nucléine iii'adiée. Sphérules ganuleuses dans le cytoplasme. Obj. F. de Zeiss. Diamètre, 0""",02.

FiG. 19. — /c/e??7.. SperaialoblasLe à nucléine irradiée dans lequelles grains de nucléine vont en décroissant de volume du centre à la périphérie, contrairement à ce qui se passe dans la fig. 18. Cytoplasme d'aspect homogène et finement granuleux.

FiG. 20. — Idem. Spermatoblaste dont la nucléine conserve par places des traces de sa disposition irradiée, mais se retire vers la périphérie du noyau. La membrane limitante de ce dernier est peu visible et semble disparaître. Cytoplasme d'aspect homogène et finement granuleux.

Fig. 2t. — Idem. Spermatoblaste dans lequel la membrane du noyau a disparu et la nucléine s'est agglomérée en une plaque irrégulière et granuleuse. Sphérules distinctes dans le cytoplasme. Phase de la cinèse sans fuseau.

Fjg. 22. — Idem. Spermatoblaste à noyau dilaté, à nucléine sous forme de grains qui tendent à se disposer suivant des méridiens. Sphérules visibles dans le cytoplasme. Obj. F. de Zeiss. Diamètre, 0'"",02.

Fig. 23. — Pagurus striatus du 6 novembre. Solution de sublimé et acide acétique à 20 %• Alcools. Carmin borate. Coupes dans le baume.

Deutospermatoblaste de la première génération en train de se diviser. Plaque équatoriale formée par la nucléine granuleuse accumulée en une masse irrégulière. Sphérules du cytoplasme.

FiG. 24. — /(/e/?i. Deutospermatoblaste avec plaque équatoriale discoïde massive et entourée d'une zone claire. Obj. F. de Zeiss. Diamètre, 0°"",016,

FiG. 25. — /rfem. Deutospermatoblaste avec plaque équatoriale massive en train de se former par agglomération des grains de nucléine.

FiG. 26, — Idem. Cellule semblable avec plaque équatoriale vue de face. Diamètre de la cellule, 0""°,017.

FiG. 27. — Idein. Petit deutosperaDatoblaste (0""",Oiri avec deux plaques polaires éloignées et trois grains de nucléine restés à la place de la plaque équatoriale. Pas de fuseau.

FiG. 28. — /(/fm.Deutospermaloblaste (0'^'",015) avec plaques polaires eu forme de lentilles convexo-concaves, à la face interne desquelles on distingue quelques séries parallèles de grains nucléiniens très délicats qui rappellent les stries du fuseau.

FiG. 29. — Aslacus du 21 juillet. Traitement par la liqueur chromoacélo-osmique de Flemming. Alcools. Dissociation dans la glycérine picrocarminatée. Obj. F. de Zeiss. Diamètre, 0'"™,038.

Protospermatoblastedans lequel se dessinent la plaque équatoriale composée de grains distincts et le fuseau. Sphériiles granuleuses très distinctes dans le cytoplasme.

FiG. 30. — Idem. Protospermaloblaste dont je n'ai vu que cet exemplaire. Plaque équatoriale très nette, formée de grains agglomérés. Fuseau et granules polaires nombreux et très petits. Le fuseau est entouré d'une masse protoplasmique claire, de forme losangique échancrée sur chaque bord. Je me suis demande si cette forme ne correspondait pas à la forme de la fîg. 29, dans laquelle les sphérules cytoplasmiques auraient été arrachées. Obj. F. de Zeiss.

FiG. 31. — Ideiyi. Protospermatoblaste à nucléine irradiée, et avec deux sphérules granuleuses dans le cytoplasme. Obs. F. de Zeiss. Diamètre de la cellule O^^^jOST, diamètre du noyau 0""°, 02.

FiG. 32. — Idem. Sj-'ermaloblaste à noyau à méridien, et une seule sphérule granuleuse.

FiG. 33. — Idem. Sperraatoblasle avec deux plaques polaires, un fuseau élire et un étranglement prononcé du cytoplasme. Une des dernières phases delà caryocinèse.

FiG. 34. — Idem. Protospermatoblaste avec plaque équatoriale, fuseau, centrosoQjes, et sphérules dans le cytoplasme. Obj. F. de Zeiss. Cellule 0""',03.

FiG. 35. — Idem. Protospeimaloblastc avec noyau à nucléine irradiée, et sphérules cytoplasmiques.

FiG. 30. — Asiacus du 5 mars. Liqueur de Millier d'abord, liqueur

chromo-acétique de Flem mi ug ensuite. Glycérine éosinohématoxylique de Renaud.

ProtospermatoblasLe à noyau bien sphérique, avec réseau délicat de grains très fins de nucléine. Cytoplasme mince, homogène, clair, rose pur, avec granulations très fines.

FiG. 37 et 38. — /de?n.Spermatoblastes à cytoplasme mince et clair, et à noyau renfermant un réseau de nucléine très granuleuse qui s'est agglomérée au niveau des nœuds. Le contenu nucléaire semble formé par un liquide chromophile qui est contenu sous forme de sphères dans les mailles du réseau ■ C'est dans cet état des spermatoblastes que l'on observe leur division directe par clivage.

FiG. 39, — Idem. Spermatoblaste dont le noyau passe à l'état de disque aplati et dense, avec sjjhérules dans le cytoplasme.

FiG. 40. — Idem. Noyau ayant perdu sa membi"ane,et prenant une forme irrégulièro, tendant à une plaque équatoriale dense et mr.ssive. Sphérules dans le cytoplasme.

FiG. 41. — /rfem. Trois spermatoblastes semblables à ceux desfig. 37 et 38.

FiG. 42 et 43. — Idem. Spermatoblastes jeunes avec nucléine à grains épars, et petites vésicules claires dans le cytoplasme.

FiG. 44. — AsUicus du 21 juillet. Acide acétique à 3 %• Vert méthyle acétique. Dissociation.

Groupe de prolospermatoblastes, avec beaux noyaux dans lesquels la nucléine se présente sous la forme de petits cônes recourbés ou cornicules à base périphérique. Belles sphérules granuleuses et légèrement colorée<i dans le cytoplasme. Obj. F. deZeiss. Diamètre moyen des cellules 0""", 14. Diamètre du noyau 0'°'", 02. Sur les coupes minces du même testicule, on voit des protospermatoblastes en voie de cinèse (fuseau, plaque équatoriale, etc.), et où les limites des sphérules nesontpas nettement dessinées.

Fjg. 45. — Ideyn. Noyau séparé de l'une de ces cellules. La membrane du noyau est très mince.

FiG. 46. — Idem. Groupe de cellules semblables à celles de la fig. 44.

FiG. 47, 48, 49, 50, 51, 53, 5i, 55, 56, 57, 58, 59, 60, 61, 64, 65, 66, 67, 68, 69.

Astacus du 12 novembre. Solution saturée de sublimé avec acide acétique glacial à 10o/„. Double coloration par l'hématoxyline et Téosine. Coupes dans le baume.

Noyaux germes gros observés avec l'objectif à immersion homogène 1/18 de pouce de Zeiss. Etats et phases diverses de la division directe par pulvérisation de la nucléine, formation de la voie lactée et clivage.

Fifr. 52. — Idem. Un protospermatoblaste jeune ayant à côté de lui un gros noyau germe subissant par pulvérisation et cliva-c une fragmentation multiple.

FiG 62. — /l5ïacu5 du 9 novembre. Sublimé et 10 % d'acide acétique glacial. Hématoxyline doDelafield. Coupes dans le baume. Quatre noyaux germes présentant de grosses masses nucléiniennes disposées par couples. Ces masses vont probablement se pulvériser; et il résultera de là des fragmentations simples ou multiples. A côté, jeune protospermatoblaste venant de se former.

FiG. 63. — Jeune protospermatoblaste venant de se former avec sa zone claire et mince. II était plongé au sein d'un protoplasme caduc granuleux, analogue à celui de lafig. 62.

Planche V.

FiG. 1, 2, 3. — Astacus du 12 décembre. Sublimé et acide acétique. Alcools. Coupes dans le baume. Double coloration à l'hcmatoxyline et à l'éosiue. Noyaux germes en voie de division directe par pulvérisation et clivage. Obj. de Zeiss. 1/12 de pouce à imm. homog.

FiG. 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11, 12. — Astacus du 23 octobre. Testicule traité par la liqueur de Ripart et Petit, et coloré parle vert méthyle. Dissociation. Noyaux germes en voie de division directe par pulvérisation de la nucléine et clivage.

FiG. 13, 14, 15, 16. — Astacus du 28 octobre. Même préparation. Noyaux germes, en voie de division directe par pulvérisation de la nucléine et clivage.

FiG. 17, 18, 19, 20. — Astacus du l'^' septembre. Sublimé. Carmin borate. Coupes dans le baume. Isoyaux germes, en voie de division directe par pulvérisation de la nucléine et clivage. Objectif de Zeiss. Iram. homogène 1/12 de pouce.

FiG. 21, 22,23, 24, 25. — Pagurus striatus du 21 mai. Sublimé et acide acétique. Alcools. Carmin aluné. Coupes. Noyaux germes en voie de division directe par pulvérisation de la nucléine et clivage.

SPEIlMATOGEVÈSlî CHEZ LES CP.USTACÉS DÉCAPODES. 365

FiG. 26, 27, 28, 29, 30. — Aslacus du 9 novembre. Tesliciile traité d'abord parla liqueur de Ripart et Petit, puis par la solution aqueuse saturée de sublimé additionnée de iO°/o d'acide acétique. Coupes colorées par rbématoxyline. Noyaux germes en voie de division directe par pulvérisation de la nucléine et clivage. Obj. Zeiss. 1/12 pouce. Imm. homogène.

FiG. 31. — Pagurusstriatus. Solution aqueuse saturée de sublimé et 10 °/o d'acide acétique glacial. Coupes colorées par le carmin aluné. Noyau germe dans lequel se produit la pulvérisation delà nucléine, et où apparaissent plusieurs voies lactées, ou bandes pulvérulentes.

FiG. 32, 33, 34. — Astacus du 28 août. Sublimé et 5 "/o d'acide acétique. Noyaux germes en voie de division directe par voie de pulvérisation de la nucléine et clivage.

FiG. 35. — Astacus du 23 août. Sublimé et 10 "/o d'acide acétique. Coupes colorées à l'hématoxyline. Noyau germe à l'état quiescent.

FiG. 36. — Idem. Gros noyau germe en voie de clivage multiple.

FiG. 37. — (Qui, par suite d'une erreur, correspond dans le texte au n° 38 de la planche) .

Aslacus du 12 novembre. Sublimé avec 10 «/o d'acide acétique. Hémaloxyline. Coupes. Cas très rare de la forme en rosette et à anses ou fers en cheval de la nucléine. Très probablement cinèse.

FiG. 38 — (Qui, par suite d'une erreur, correspond dans le texte au no 37) .

Astacus. Sublimé et 20 % d'acide acétique. Hémaloxyline; objectif 7 de Vérick. Protospermatoblaste avec fuseau et séparation de la plaque équatoriale eu 2 plaqu*:'S polaires composées de nombreuses séries de fins granules.

FiG. 39. — Astacus du 23 août. Sublim.é et 5 % d'acide acétique. Hémaloxyline etéosine. Dissociation dans la glycérine. Spermatoblaste ayant 2 plaques polaires unies par un fuseau, et formées chacune d'une masse principale et d'une portion aberrante.

FiG. 40. — Uomarus vulgaris du 10 janvier. Sublimé et 20% d'acide acétique. Alcools. Carmin borate. Coupes dans le baume. Protospermatoblaste en voie de caryocinèse. Fuseau et sphérules protoplasmiques.

FiG. 41. — Pagurus striatus du 13 mars. Acide acétique à,5 % Vert raélhyle. Dissociation. Deux noyaux germes quiesceuts.

FiG. 42 Cl 43. — Idem. Deux prolospermaloblastcs à nucluine irradiée s'ctant éloignée du centre du noyau.

FiG. 44. — Idem. Protospermaloblaste en voie de caryocinèse. La membrane nucléaire a dispaiii cl la nucléine est sous forme de fragments pelotonnés.

FiG. 45. — Pagurus slrialus 12 mars. Sublimé avec 10 % d'acide acétique. Dissociation dans la glycérine picrocarminatée. Deutospermatoblastes de la première génération en voie de caryocinèse sans fuseau. Plaque équaloriale. Cellule de 0"",026 de diamètre. Obj. DD de Zeiss.

FiG. 46. — Idem. Deutospermatoblaste quiescentavec sphérules cytoplasmiques. Cellule de 0'"'",028 de diamètre.

FiG. 47. — Pagurus striatus d'avril. Sublimé el acide acétique 20 %• Dissociation dans la glycérine bématoxylique de Renaut. Cellule en voie de cinèse sans fuseau.

FiG. 48. — Idem. Deutospermatoblaste dans lequel les deux cellules filles sont déjà distinctes Cinèse sans fuseau.

FiG. 49. — Me?)}. Avec plaque équaloriale sans fuseau. Vue de champ.

FiG. 50. — Idem. Vue de face.

FiG. 51. — Idem. Deux deutospermaloblastes avec noyau quiescenl et sphérules cytoplasmiques.

Fjg. 52. — Idein. Deux deutospermaloblastes dont celui de gauche a le noyau massif, et dont le second présente uue plaque équaloriale, irrégulière, et un fuseau partiel.

FiG. 53 et 54. — Pagurus striatus â.\i9 avril. Eléments étudiés à Véiat frais dans le sérum sanguin de l'animal. Deux deuiospermaloblastes à l'état quiescentavec divisions du cytoplasme en régions distinctes. Obs. DD de Zeiss. Diamètre, 0">'",028.

FiG. 55. — Pagurus striatus du. -23 awil. Sublimé et 10% d'acide acétique. Dissociation dans la glycérine bématoxylique de Henaut.

Deutospermatoblaste dont le cytoplasme épais paraissait constitué par deux couches de sphérules dont les internes se coloraient mieux que les externes.

FiG. 56. — Idem. Deutospermatoblaste en voie de former la plaque

équaloriale sans fuseau.

FiG. 57. — Idem. Avec plaque équaloriale vue de champ.

FiG. oH. — Pagurus strialus àu d avril. Eléments observés à l'état frais dans le séram sanguin de l'animal. Dentospermatoblaste à l'état quiescent avec sphérules dans le cytoplasme. Obs. DD de Zeiss. Diamètre, 0""",0i!8. FiG. 59, 60, 61, 62. — Idem. Eléments frais dans le sérum, avec légère coloration par le violet degentiane. Denlospermatoblastes de la première et de la deuxième géuération, avec plaqu3séqnatoriales massives, sans fuseau, et avec sphérules cytoplasmiques. Obs. DD de Zeiss. Diamètre, 0'"'»',0î'6 et O^^.OIT. FiG. 63. — Idem. Deutospermatoblaste quiescent. FiG.64. — Pagurus slriatus du 23 avril. Sublimé et 5 7o d'acide acétique. Dissociation dans la glycérine hématoxylique de Renaut.

Deutospermatoblaste avec plaque équatoriale sans fuseau. FiG. 65. — Pagurus stj'iatus du 14 mai. Sublimé et 10 % d'acide acétique. Dissociation dans la glycérine hématoxylique de Renaut Obj. 10 à immersion de Prazmowski. Spermatoblaste avec plaque équaioriale se dédoublant, et fuseau court et peu accentué.

FiG. 66. — Pagurus striatus du 23 avril. Sublimé et 5 % d'acide acétique. Dissociation dans la glycérine hématoxylique de Renaut. Spermatoblaste avec plaque équatoriale et deux sphérules CYtoplasmiques.

FiG 67, 68, 69, 70. — Pagurus striatus du 11 février. Liqueur de Flemming. Alcools Carmin aluné. Coupes dans le baume. Deutospermatoblaste en voie de cinèse sans fuseau.

FiG. 71. — Idem. Avec fuseau très imparfait. Stries entre les deux plaques, et masses coniques granuleuses sur les faces externes des plaques. Obj. F de Zeiss.

FiG. 72. — Pagurus striatus du 28 mai. Sublimé et 10 <»/o d'acide acétique. Alcools, Carmin aluné, coupes dans le baume. Protospermatoblaste envoie de caryocinèse, avec fuseau, asters et sphérules cvtoplasmiques.Obj. apochromatique à immersion 1,25 de Zeiss. Ocul. compensateur 12.

FiG. 73. — Mon. Deutospermatoblaste en voie de condensation nucléaire. Même objectif .

FiG. 74. — Idem. Deutospermatoblaste de la deuxième génération venant de se constituer.

Fir.. 75. — Idem. Dentospcrmdt.oblastes de la première génération, en voie de cinose sans fnsean. Los diMix plaqncs polaires se séparent en divergeant.

FiG. 70. — Pagurus slriatus du -JO mars. Va[(Cnr3 osmiques. Vert mélhyle. Dissociation. Gellul(3 dans la prophasc de la caryocinèse. Phase pelotonnée delà nucléiuc.

FiG. 77. — Pagurus strlatus dn 2',i avvW. Sublimé et 10 "/o d'acide acétique. Alcools. Carmin aluné, coupes.

Dentospermatoblastes en voie déconcentration de la nuclcine pour une cinèse sans fuseau.

FiG. 78 et 79. — Idem. Plaques équatoriales sans fuseau vues de face.

FiG. 80, 81, 82. — Lient. Prostosperraaloblastes en voie de caryocinèse. Plaque équatoriale, fuseau, sphérules cytoplasmiques, Dans la fig. 82, on n'a pas marqué la structure gi'anuleuse des sphérules.

FiG. 83. — P. striatus du 5 avril. Sublimé avec 5 % d'acide acétique. Alcools. Carmin aluné. Coupes dans le baume. Groupe de dentospermatoblastes dont les uns ont la forme irradii'c de la nucléine, et les autres la forme condensée ou massive préparant la caryocinèse. Les sphérules cytoplasmiques des cellules à noyau condensé sont plus granuleuses et plus colorées que celles des cellules à noyau irradié. On n'a pas représenté les granulations dans quelques-unes des cellules à noyau condensé.

Obj. F de Zeiss. Diamètre des cellules, 0""°,02.

FiG. 84, Sr», 80. — Idem. Dentospermatoblastes eu voie de formation de la plaque équatoriale sans fuseau. Obj. J à immersion de Zeiss.

Fig. 87. — Idem. Groupe de dentospermatoblastes en voie de caryocinèse sans fuseau. Phases diverses .

Fig. 88 et 89. — Idem. Deutospermatoblasies avec plaque équatoriale et pseudo-fuseau grenu. Obj. Zeiss Là immersion.

Fig. 90. — Llem. Plaque équatoriale sans fuseau.

Fig. 91. — Idem. Un deutospermatoblaste de la première génération avec plaque équatoriale irrégnlière sans fuseau, et deux dentospermatoblastes de la deuxième génération à l'état quiescen t. Obj . L à immersion de Zeiss .

Fig. 92. — P. striatus du 14 mai. Sublimé et 10 % d'acide acétique. Alcool. Dissociation dans la glycérine carminée. Deutospermatoblaste à noyau condensé.

SPERMATOfiENÈSE CHEZ LES CRUSTACÉS PÉCAPODES. 3G9

FiG. 93 et 94. — Idem. Dciitospermatoblaste en voie de formation de

la plaque équatoriale sans fuseau FiG. 95. — Idon. DeulospormaLoblaste avec sphérules cyloplasmi-

ques, dont l'une est claire.

FiG. 96et97. — Idem. Frotospermatoblastes avec plaque équatoriale et fuseau peu accentué et surbaissé. Obj. F de Zeiss.

Diamètre. 0""'\03.

FiG. 98. — P. atriatus du 18 mars. Sublimé et acide acétique 20 7o-

Alcools. Kématoxyline. Coupes dans le baume. Deulospermatoblaste avec noyau condensé, et sphérules cy'.o-

plasmiques riches en grosses granulations. Obj. de Zeiss.

1/12 pouce à immersion homogène. Diamètre, 0""",0i8. FiG 99, 100 et [01. — Idem. Deutospermatoblastes avec vésicules

cytoplasmiques d'aspects ditTérents.

FiG. 102 et 103.— P. striatus du 18 mars. Sublimé et acide acétioue. Hémato.vyline. Coupes dans le baume.

Gros noyaux germes, venant de se fragmenter par clivage.

FiG. 104 et 105. — P. striaius du 4 décembre. Sublimé et acide acétique. Dissociation dans le carmin de Béale. Deutospermatoblastes avec noyau à uucléine irradiée. Obj. F de Zeiss. Diamètre de la cellule 0™'n^02. Diamètre du noyau 0""",0 16.

FiG. 106, 107, 108 et 109. — Astacus du 5 mars. Sublimé et acide acétique. Alcools, carmin borate ; coupes dans le baume. Protospermatoblastes à noyau pourvu d'un fin réseau, nucléinien et à cytoplasme mince renfermant des vésicules claires. Sublimé et S^/o d'acide acétique. Carmin aluaé. Coupes.

FiG. 110. — Maja squinado du 26 mars. Deux spermatoblastes quiescentsavec divisions du cytoplasme. Obj. DD. de Zeiss. Diamètre O^^.On.

FiG . 111. — Idem. Groupe de deutospermatoblastes à noyau condensé.

FiG. 112. — P. striatus du 1" décembre. Liqueur de Ripart et Petit. Vert méthyle acétique.

Protospermatoblastes dont le cytoplasme présentait des aptitudes chromophiles assez prononcées ; noyau germe à côté des deux cellules.

FiG. 113. — Idem. Avec condensation centripète de la nucléine irradiée ; et avec cytoplasme rayonné et non chromophile. Les cellulesdela fîg. 112etdelafig. 113 présentaient un contraste marqué.

370 A. SADATIER.

FiG. 114 et 115. — Aslacusdu 8 novembre. Dissociation dans le vert méthyle acéto-osmique. Grands noyaux germes venant de se fragmenter.

FiG. 116.— P. 5irmiU5 du 19 mars. Sublimé et 10 "/o d'acide acétique. Alcools; hémato.xyline. Coupes dans la glycérine. Deu.x deutospermaloblastes dont l'un a le noyau condensé et les sphérules protoplasmiques assez colorées, et l'autre a le noyau irradié, et les sphérules moins coloiées. Obj. J à immers, de Zeiss.

FiG. 117. — P. slriatus du 26 mars. Sublimé et acide acétique, Gai-min aluné. Coupes dans le baume.

Protospermatoblaste en voie de caryocinèse.

FiG. 118. — P. slriatus de décembre. Liqueur de MûUer. Hémaloxyline.

Protospermatoblastes ayant 0""", 038 de diamètre et deutospermaloblastes de la deuxième génération ayant 0™",008. Obj. F de Zeiss.

FiG. 119 et 120. — P. strialus. Subliméel acide acétique. Carmin aluné. Coupes. Deutospermaloblastes de la première génération, préparant la formation de la plaque équatoriale.

Planche VI.

FiG. 1. — Pagurus slriatus du. 9 avril. Sublimé et 10 7o d'acide acétique. Coloratiou sur coupes avec le carmin aluné. Coupes dans le baume. Trois deutospermaloblastes dont le noyau commence à se condenser pour la préparation de la plaque équatoriale. Sphérules granuleuses du protoplasme passablement colorées.

FiG. 2. — Pagurus slriatus du 28 novemhve. Fixalion et durcissement dans le bichromate d'ammoniaque à 2 7o pendant deux mois ; Alcools ; coloration par la glycérine picrocarmiualée. Spermatoblastes pris sur les bords d'un cul-de-sac. Noyaux quiescents àchromaline granuleuse disséminée, sphérules finement granuleuses du protoplasme. Obj . F de Zeiss. Ocul. 2.

FiG. 3. — Ide/n. Une de ces cellules vue avec un plus fort grossissement, Obj. F de Zeiss. Oc. 3. Diamètre 0'"«",02,

FiG. 4. — Pagurus slriatus du 5 mars. Subliméel 20% d'acide acétique. Alcools. Dissociation, et coloration par le violet de

SPEn>rATOGENÉSE CHEZ LES CRUSTACÉS DÉCAPODES. 371

gentiane. Obj. J à immersion de Zeiss. OcqI. compensateur 8.

Deux spermatoblastes à l'état quiescent, sphérules protoplasmiquGsA gros grains. Diamètre 0'"'",02.

FiG. 5. — Idem. Noyau très volumiueu.K à grains de chromatine rares ; et sphérules à gros grains qui n'ont pas été dessinés partout, pour simplifier la figure.

FiG. 6. — P. striatus du. 9 novembre. Liqueur de Millier. Dissociation et coloration par la glycérine hématoxyliquede Kenaut. Noyaux à grains de chromatine rares et périphériques. Protoplasme à grosses granulations se colorant faiblement. Obj. F de Zeiss. Diamètre 0'°"S016.

FiG. ?. — Idem. Deux protospermatoblastes jeunes à zone protopiasmique très mince, avec formation de granulations protoplasmiquos au contact du noyau.

FiG. 8. — Homarus viUgaris du 10 janvier. Sublimé et 20 % d'acide acétique. Alcools. Carmin borate. Coupes dans le baume. Trois protospermatoblastes en voie de cinèse ; formation du fuseau et de la plaque équatoriale. Belles sphérules protoplasmiques finement granuleuses. Dans la cellule a deux sphérules claires avec grains périphériques plus gros. Immersion homogène 1/18 de pouce de Zeiss. Diamètre 0'""\0 18.

FiG. 9. — Idem. Cellule avec plaque équatoriale vue de face.

FiG. 10. — /t/em. Deux protospermatoblastes fusiformes situés sur les confins d'une poche spermatique ou nid, et eu voie de cinèse. Fuseau, plaque équatoriale, et sphérules protoplasmiques.

FiG. 11. — P. striaius du 20 novembre. Sublimé et 20 % d'acide acétique. Alcools. Carmin borate. Dissociation. Protospermatoblastes à nucléine irradiés et sphérules protoplasmiques.

FiG. 12. — Idem. ProLospermatoblaste à nucléine irradiée, avec un nucléole ou vésicule incolore au centre.

FiG. 13. — /f/e;m. Comme fig. 11.

FiG. 14. — P. striatus ùa II décembre. Sublimé et 20 % d'acide acétique. Dissociation dans le carmin de Beale. Protospermatoblaste avec belles sphérules protoplasmiques peu différentes en apparence du noyau.

FiG. 15. — P. striatus du 20 novembre f voir fig. II). Spermatobla te à noyau quiescent avec deux sphérules protoplasmiques.

Fig. 16. — P. strialusûu 19 mars. Sublimé et 10 % d'acide acétique. Alcools. Hématoxyline sur les coupes. Coupes dans la glycérine gélatiuée.

212 A. SAiiATit:n.

Deux gros Eoyaux germes ayant subi une fragmentation multiple.

FiG. 17, — P. striaius au 14 mai. Sublimé et 10o/od"acide acétique. Alcools. Coupes colorées par le carmin aluné. Groupes de deulospermatoblastes de la deuxième génération, parmi lesquels un deulospermatoblasle de la première génération ne s'est pas encore divisé, mais a un noyau condensé qui se prépare à la cinèse simple. Structure réticulée très évidente du cytoplasme.

FiG. 18. — Idem. Deutospermatoblaste de la deuxième génération avec une jeune vésicule sous forme d'un corps sphérique petit, très réfringent, encore incolore, sauf peut-être quelques grains très fins sur la membrane.

FiG. 19. — Idem. a. Etat plus jeune de la vési' ule. b noyau isolé avec une vésicule très jeune.

FiG. 20. — Idem. Deutospermatoblaste se préparant à la formation de la plaque équatoriale iforme dense) par la disparition de la membrane nucléaire, et Je rétrécissement du noyau. Cytoplasme réticulé.

FiG. 21. — P.striatus du 5 mars. Liqueur chromo-acéto-osmique de Flemming. Dissociation dans l'éosine hématoxylique de Renaut.

Beau protospermatoblaste ànucléine irradiée, et à belles sphérules cytoplasmiques. Obj. DD dcZeiss. Diauiètre Oj^^OS.

Fjg. 22, 23, 24. — Idem. Trois deulospermatoblastes qui se préparent à la cinèse (forme simple) par la condensation delanucléine dans les carrefours situés entre lessphérulescytoplasmiquês. En 22 et 23 on n'a pas indiqué les grains du cytoplasme afin de mettre plus en évidence les grains de nucléine.

FiG 25, 26. — P. striaius du 14 mai. Sublimé et aride acétique 10 "/o- Dissociation dans la glycérine hématoxylique de Renaut. Deux deulospermatoblastes en préparation de cinèse simple, sans fuseau. Formes particulières.

FiG. 27, 28. — P. striaius (iu2]. mai. Subliméetacideacétique. Alcools. Coupes colorées par le carmin aluné.

Deux deulospermatoblastes se préparant à la cinèse. Formes remarquables de la plaque équatoriale. Réticulum du cytoplasme.

Fjg. 29. — Ide7n. a Forme remarquable de la phase de formation de la plaque équatoriale, b deulospermatoblastes comprimés,

entourant la cellule a et dans lesquels lazonecytoplasmique n'est pas visible.

FiG. 30. — Astacus du2[ novembre. Liqueur de Miiller. Dissociation dans la glycérine hémaloxylique de Renaut. Protûspermatoblaste jeune avec noyau à réseau à grandes mailles. Obj. L à immersion de Z^jiss.

Fjg.31. — Idem. Protospermatoblaste jeune avec noyau à fins granules qui n'ont pas été représentés partout. Cytoplasme dans lequel apparaissent des grains qui ee colorent faiblement.

FiG. 32, — Idem. Protospermatoblaste très jeune, à cytoplasme très mince dans lequel apparaissent quelques vésicules ou spbérules.

FiG. 33. — ^5kia/5 du 21 juillet. Sublimé, alcools, coupes. Hématoxyline, Protospermatoblaste avec plaques polaires, et plaque fusoriale très indiquée par des grains fins.Sphérules cytoplasmiques. Obj. FdeZeiss.

FiG. 34, — Idem. Plaque équatoriale et fuseau isolés.

FiG, 35. — Idem. Protospermatoblaste se préparant à la cinèse. Grains nucléinieus orientés en méridiens.

FiG. 36. — Idem. Même explication.

FiG, 37, — Idem. Protospermatoblaste jeune avec cytoplasme à sphérules rares petites, et avec noyau dont la nucléine a la forme de petits cônes recourbés ou de petites cornes.

FiG. 38. — P. striatus du 27 février. Liqueur de Millier. Alcools. Coupes colorées par l'hémaloxyline.

Jeune spermaloblasle quiescent; cytoplasme à petites sphérules .

FiG. 39, — P. slriatus de novembre. Liqueur de Millier pendant trois mois. Dissociation. Eosine hématoxylique de Henaut. Protospermatoblaste avec deux inclusions ou petites sphérules, assez colorées en bleu.

FiG. 40. — Homarus vulgaris du 10 janvier. Sublimé et acide acétique. Carmin borate. Dissociation.

Protospermatoblaste avec plaque équatoriale et fuseau, et trois deutospermatcblasles dont deux présentent des noyaux condensés se préparant à la cinèse. Sphérules du cytoplasme,

FiG. 41. — Idem. Protospermatoblaste avec fuseau, et trois noyauxgermes voisins. Spbérules du. cytoplasme,

FiG, 42. — Idem. Protospermatoblaste avec fuseau. Sphérules du cytoplasme.

374 A. SABATIEn.

FiG. 43. — P. slriatus du 7 mai. Liqueur de Flemming. Alcools.

Coupes dans le baume. Carmin borate.

Jeunes protospermatoblasles avec zone cytoplasmique mince,

dans laquelle apparaissent des grains, qui semblent se réunir

en sphérule?.

FiG. 44. — Idem. Protospermatoblas'e, à noyau peu riche en chro-

matine et à sphérules cytoplasmiques hypertrophiées. FiG. 45. — Aslacus du 28 août. Sublimé et 5 % d'acide acétique. Coupes

dans le baume. Hématoxyline.

Forme condensée du noyau préparant la cinèst'^, et réseau du

cytoplasme.

FiG. 46. — Astacus du 28 août. Même préparation.

Plaque équatoriale vue de face.

FiG. 47. — P. striatus du 29 mai. Testicule dissocié à l'état frais

dans le sérum du sang de l'animal. Prolospermatoblaste avec

sphérules cytoplasmiques.

FiG. 48. — P. st7-ialus du 30 novembre. Liqueur de Hipart et Petit.

Vert méthyle acétique. Dissociation. Prolospermatoblaste,

avec noyau à gros grains de nucléine.

FiG. 49 et 50. — P. striatus du 30 novembre. Liqueur de Ripart et

Petit. Vert méthyle acétique. Dissociation. Deux spermatoblastes dans la phase de condensation du noyau. FiG. 51. — Idem. En voie de cinèse simple avec plaques polaires

réunies par un pédicule.

FiG. 52. — P. striatus du 30 novembre. Sublimé et acide acétique

Dissociation dans la glycérine hématoxyliquc de Renaut. Deutospermatoblaste en voie de cmèse simple sans fuseau. Phases de la division de la plaque équatoriale. Les deux plaques polaires se composent chacune de séries de grains de nucléine, qui paraissent se continuer avec les tractus du réseau cytoplasmique, tractus sur le parcours desquels sont çà et là de petits grains de nucléine. (Le graveur n'a pas assez rendu cette continuité.) FiG. 53 et 54. — yli/acu^ du 23 août. Sublimé et 20 V» d'acide acétique. Carmin aluné.

Fuseaux et plaques équatoiiales à gros tronçons courts commençant à se séparer.

FiG. 55. — Idem. Plaque équatoriale semblable, mais vue de face.

Eléments disséminés.

FiG. 56. — Idem. Plaque équatoriale à éléments surtout périphériques.

SPKRMATOGENESE CHEZ LES CRUSTACÉS DECAPODES. ô i ,)

FiG. 57. — Idem. Plaque équatoriale à éléments périphériques et centraux.

FiG. 58. — Diogenes varians du 15 mars. Liqueur de Ripart et Petit. Vert méthyle acétique, Protospermatoblaste avec noyau condensé, ou plaque équatoriale vue de face, envoyant des prolongements entre les sphérules.

FiG. 59. — Astacus du. 1" septembre pris en liberté. Sublimé. Alcools. Coupes colorées par la méthode de Grenacher. Groupe de deutospermatoblastes de la deuxième génération qui vont bientôt se transformer en spermatozoïdes. Les uns ont le noyau sphérique; d'autres, qui résultent d'une cinèse plus récente, ont le noyau discoïde. Obj. apochr. 0,4deZeiss. Diamètre 0,015.

FiG. 60 à 71. — Idem. Phases diverses de la formation du spermatozoïde .

FiG. 72à80. — Idem. Mêmes phases que dans les figures précédentes.

FiG, 81, 82, 83, 84. — Astacus du 21 juillet. Sublimé. Hématoxyline. Coupes. Deutospermatoblastes provenant d'une cinèse très récente. Noyau discoïde et excentrique,

FiG. 85, 86, 87, 88, 88 bis, 89, 90. — Astacus du 28 août, pris en liberté. Sublimé et acide acétique 20 °/o. Alcools. Dissociation dans la glycérine éosinée. Quelques phases de la formation des spermatozoïdes.

FiG. 91. — Idem. Deutospermatoblaste à vésicule réticulée et à grains disséminés.

FiG. 92, 93, 94, 95. — Astacus du 25 novembre. Liqueur de Ripart et Petit. Vert méthyle acétique. Formation du spermatozoïde.

FiG. 96. — Vue isolée de la coupole. Le graveur a omis de représenter les grains et les inégalités saillantes de la concavité du crépissage.

FiG. 97, 98. — ^5iaciis du 8 janvier. Sublimé et acide acétique 10 %. Spermatozoïdes observés dans le canal déférent.

FiG. 99. — Astacus du 8 novembre. Vert méthyle acéto-osmique. Dissociation dans la glycérine.

Spermatozoïde vu de champ.

FiG. 100. — Idern. Avec irradiations dans la vésicule.

FiG. 101. — Idem. Spermatozoïde vu de face.

FiG. 102. — Idem. Spermatozoïde vu de champ.

FiG. 103 à 117. — Astacus du 12 novembre. Dissociation dans le vert méthyle acéto-osmique et dans la glycérine. Spermatozoïdes

376 A. SABATIEn.

pris dans la première portion du canal déférent, et vus de champ.

FiG. 118. — Idem. Spermatozoïde vu de face.

FiG. 119 à 128. — Astacus du 2 novembre. Liqueur de Ripart et Petit. Vert méthyle. Dissociation.

Spermatozoïdes pris dans le canal déférent. Le 121 est vu de face .

FiG. 129 à 135. — Astacus du 23 avril. Sublimé et acide acétique à 10 %• Alcools. Coupes. Double coloration par l'hématoxyline et l'éosine. Spermatozoïdes observés dans le canal déférent et vus de champ. En 133 et 134 on voit le profil de la zone protoplasmique qui constitue les prolongements repliés, sous la forme de deux masses claires et roses situées en dehors des bords de la coupole.

FiG. 136 à 139. — Astacus du 12 novembre. Vert méthyle acétoosmique. Dissociation dans la glycérine. Obj. L. à immersion de Zeiss.

Spermatozoïdes vus de champ.

Planche VII.

FiG. 1, 2, 3. — Astacus du 28 octobre. Liqueur de Uipart et Petit. Dissociation dans le vert méthyle.

Spermatozoïdes.

FiG. 4, 5, 6, 7. — Astacus du 3{ décembre.

Spermatozoïdes observés sur le fiais d'abord, et ensuite avec addition de glycérine picro-oarmiuatée.

FiG. 8,9, 10. — P. striatus du 14 mai. Sublimé et acide acétique 10%, carmin aluiié. Dissociation. Spermatozoïdes se formant avec crépissage de la vésicule.

FiG. 11. 12. — P. striatus du 12 mars. Sublimé et acide acétique 10 7o. Dissociation dans la glycérine hématoxylique. Spermatozoïdes eu voie de développement avec tigelle commençante dans fig. 11, et granulations dans la vésicule dans fig. 12.

Fig. 13 — P. striatus 14 décembre. Liqueur de Ripart et Petit. Vert méthyle et ensuite brun bismai'k. Coupole épaisse et bien formée, granuleuse, d'un vert intense. Noyau bien moins coloré en vert.

Fig. 14, 15, 16. — Idem. Spermatozoïdes avec tigelle.

SPEPMATOGDNÈ-E CHKZ LKS CMUST.aCÉS UÉCAPÛDES. 377

FiG. 17. — Idem. Spermatozoïde se développant, avec grains de crépissage localisés et isolés.

FiG. 18. — Idem. Vésicule se développant et refoulantle noyau.

FiG. 19. — Idem. Spermatozoïde. Le noyau sphérique est faiblement coloré en vert brun. La coupole est vert intense. La tigelle l'est également.

FiG. 20. — /dtfw. Dans le noyau vert-brun faible est une tige verticale verte. Coupole très verte continue avec la tigelle très verte.

FiG. 21. — Idem. Spermatozoïde. Noyau brun, à [jeine un peu vert. Coupoles et boutons très verts.

FiG. 22. — Idem. Noyau brun avec disque horizontal vert au centre. Coupole d'un vert intense.

FiG. 23. — Idem. Noyau aplati et dense vert. Coupole et tigelle vertes.

FiG. 24, 25, 26. — P. strialus du 12 mars. Sublimé et acide acétique 10 7o- Dissociation dans l'éosinehématoxylique de Renaut. Spermatozoïdes en voie de développement.

FiG. 27 à 32. — P.slriatus. Liqueur de Millier. Hématoxyline. Dissociation dans la glycérine.

Deutospermatoblasles avec vésicules céphaliques dout quelques-unes multiples.

FiG. 33 et 34. — P. striatus du 2 mars. Dissociation du testicule frais dans une solution de NaCl à 10 7o« Deux spermatozoïdes bien développés.

FiG. 35 à 46. — P. callidus du. 29 mai. Liqueur de Flemming ; vert méthyle. Dissociation.

Spermatozoïdes. Formes diverses.

FiG 47. — P. strialus du 30 novembre. Liqueur de Ripart et Petit ; vert méthyle. Dissociation.

Spermatozoïdes à zones ou cercles de nucléine.

FiG. 48 à 51 . — P. sUiatus. Liqueur de Ripart et Petit. Hématoxyline et éosine. Dissociation. Diverses formes de spermatozoïdes.

FiG. 52. — Idem. Spermatozoïde en voie de développement.

FiG. 53 à 59. — P. strialus du l'^'" décembre. Liqueur de Ripart, vert méthyle acétique.

Diverses formes de spermatozoïdes, •&vec ou sans cercles de nucléines.

FiG. 60 et 61. — P. strialus du 7 janvier. Vert méthyle acétique. Deux spermatozoïdes.

FiG 62 et 63. — P. strialus. Deux spermatozoïdes observés à l'état

frais dans le sérum du sang de l'animal. FiG. 64, 65, 67. — P. striatus. Sublimé et acide acétique 20 °/o. Carmin aluné. Trois deutospermaloblastes avec vésicule très

jaune.

FiG. 67 à 71. — Paguristes maculatus du 29 mars. Liqueur de Ripart

et Petit. Vert méthyle acétique. Dissociation. Deutosper-

matoblastes avec diverses phases du développement de la

vésicule.

FiG. 72. —/d^m. Spermatozoïde avec crépissage composé de grains

distincts séparés. Prolongements protoplasmiques dédoublés

par une erreur du graveur. Il y a trois prolongements ou

filaments.

FiG. 73. —Idem. Spermatozoïde. Même erreur. Il n'y a que trois

prolongements filiformes.

FiG. 74 à 78. — P. ?nacu7a/u5 du 16 juin. Liqueur de Ripart et Petit.

Yert méthyle acétique. Dissociation.

Spermatozoïdes avec noyau sphérique homogène, à couleur

verte tendre.

FiG. 79 à 85. — P. 7nflcu/am5 du 8 décembre. Même préparation.

Spermatozoïdes à noyau granuleux.

FiG. 86 à 94. — Scyllarus ardus. Alcool à 70'. Glycérine picro-car-

minalée. Dissociation. Spermatozoïdes.

FiG. 95 et 96. — Idem du 5 juin. Spermatozoïdes observés à l'état

frais dans le vert méthyle acétique. FiG. 97. — Idem du 5 juin. Spermatozoïde observé à l'état frais dans

le sang de l'animal.

FiG. 98.— Idem. Comme fig. 95 et 96.

FiG. 99 à 107. — Scyllarus ardus du 19 juin. Vert méthyle acétique.

Diverses formes de spermatozoïdes.

FiG. 108. — Idem. Spermatozoïde frais dans le sang de Tanimal. FiG. 109 à 121. — Palinurus vulgaris du 22 février. Liqueur de Ripart et Petit et acide osmique, par lies égales. Vert

méthyle. Dissociation du canal déférent. Spermatozoïdes de diverses formes.

FiG. 122 à 124. — Homarus vulgaris. Sublimé et acide acétique. Alcools. Coupes. Trois deutospermaloblastes avec grosses vésicules montrant le crépissage interne. Fig. 125. — Maja srjuinado ûu 2(j mnvs. Sublimé et acide acétique 20 o/o. Carmin aluné. Coupes dans la glycérine. Deutospermatoblasto à noyau assez dense.

SPEaMATOOENÈSE CHEZ LES CRUSTACÉS DÉCAPODES. 379

FiG. 126 à 128. — Idem. Deatospermatoblastes avec vésicules à

divers degrés de développement.

FiG. 129 et 130. — Idem. Dissociation dans la glycérine après fixation comme ci-dessus.

FiG. 131. Ide7n. Spermatozoïde à coupole plaie et à anneau équalo-

rial de nucléine.

FiG. 132 et 133. — Maja squinado du 14 février. Sublimé et acide acétique. Carmin aluné. Groupes de deutospermaloblastes à noyau.x en apparence diffus et homogènes. La zone de protoplasme propre était très mince et à peine perceptible. FiG. 134 à 141 — Idem. Spermatozoïdes vus de champ etde face. FiG. 142 et 143. — Maja squinado. Vert mélbyle acétique. Deux

spermatozoïdes.

FiG. 144 et 145. — Maja squinado Spermatozoïdes observés frais

dans l'eau de mer et le sang de l'animal. FiG. 146. — Maja squinado. Vert méthyle acétique. Deutospermato-

blasle. FiG. 147 à [bi. — Maja squinado. Sublimé et acide acétique 20 o/^. Vert méthyle acétique.

Spermatozoïdes pris dans un canalicule lesliculaire. FiG. 155 à 157. — Maja squinado. Sublimé et acide acétique 20 %. Carmin de Béale.

Spermatozoïdes pris dans le canal déférent. FiG. 158 à 162. — Carci'nus ?ncpna5 du 8 décembre. Liqueur de Ripart et Petit. Vert méthyle acétique.

Spermatozoïdes. Objectif F. de Zeiss.

FiG. 163 à 165. — Idem. Objectif 9 à immersion de Hartnack. FiG. 166 à 170.— Idem. Objectif F. de Zeiss. FiG. 171 à 180. — Stenorhynchus longirostris du 5 janvier. Liqueur de Ripart et Petit. Vert méthyle acétique. Spermatozo'ides. FiG. 181 et 182. — Homarus vulgaris du 10 janvier. Sublimé et acide acétique 20 %. Alcools. Carmin borate. Coupes. Deux deutospermatoblastes avec vésicule.

FiG. 183. — Idem. Homarus vulgaris du 23 février. Spermatoblaste

avec vésicule plus développée et crépissage. FiG 184. — Corysles denlalus du 12 mars. Liqueur de Rijjart et Petit. Vert méthyle acétique.

Deutospermatoblaste de la deuxième génération. FiG. 185 et 186. — Idem. Deutospermatoblastes avec vésicule et commencement de crépissage.

380 A. !?AnATIKR.

FiG. 187 à 191. — Idem. Spermatozoïdes pris dans les spormatophores. Objectif F. de Zeiss. Diamètre 0'"'n.OOG.

FiG. 192. — Spevmixlozoïde de Maj,i squinado d'ai)vès G. Hermann.

FiCt. 193. — Spermatozoïde de Hom.arus d'après G. Hermann.

FiG. 194, 195 et 196. — Dromia vulgaris. Vort méthyle acétique. Spermatozoïdes pris dans le canal déférent.

FiG. 197 à 202. — Carcinus mœnas du 21 décembre. IJqiiear de Hipart et Petit. Vert méthyle acétiqne.

Spermatozoïdes pris dans les spermatophores. Obj. )/18 pouce à immersion homogène de Zeiss. Diamètre O^^.OOô. Hauteur 0™"^,007 pour les plus grands.

FiG. 203 à 209.— Idem vus ave: l'Objectif apochromatique 0,4 de

Zeiss.

Fjg. 210. — Dromia vulgaris. Dissociation dans Ripart et Petit et

vert méthyle acétique.

Deutospermatoblaste avec très petite vésicule que le graveur a

oubliée et qui était sous forme d'un très petit globule

contigu au noyau.

FiG. 211 à 216. — /dnn. Spermatozoïdes pris dans le canal déférent. FiG. 217 à 222. — Astacus fluviatilis dix l"mars. Liqueur de Pupart

et acide osmique. Vert méthyle acétique. Spermatozoïdes pris dans la partie inférieure du canal déférent. FiG. 223.— J/o/a 5çuma(/o du 26 mars Sublimé et acide acétique.

Coupes colorées par le carmin aluné. Spermatozoïde vu de

champ.

FiG. 224. — Idem. Spermatozoïde vu de face. FiG. 225. — Paguristesmaculatus. Liqueur de Ripart; vert méthyle.

Protospermatoblasles dont la membrane nucléaire a disparu

avec grains chromophiles verts répandus dans le cytoplasme,

se préparant à la cinèse.

Planche VIIl.

FiG. 1. — Homarus vulgaris du 28juin. Liqueur de Ripart et Potil. Vert méthyle acétique.

Protospermatoblaste quiescent avec un Nebenkern ou noyau accessoire chromophile entouré d'une zone claire, et un gros nucléole.

FiG. 2. — Idem. Liqueur de Ripart et Petit. Picrocarminate d'ammoniaque. Deutospermatoblaste à deux vésicules.

SPEmiATOOENÈSE CHEZ LES CRUSTACÉS DÉCAPODES. 381

FiG. 3. — Idem. Liquem- de Ripart et Petit. Vert mélhyle acétique.

Spermaiozoï.Je en voie tle di^voloppem^nt. Noyau homogène.

GiMude v(-siciile. Zone protoplasmique. Début de latigelle.

FiCt. 4 à 9. — Idem. Diverses formes de spern]atozoïdes, vues sons

divers aspects.

FiG. 10. — Idem. Liqueur de Ripait et Petit. Violet de gentiane.

Sperma:ozoïde en voie de développement.

FiG. 11 à 14. — Idem. Vert n.éLhyle. Deutospermatoblastcset speimatozoïdes avec des degrés divers de la vésicule et du crépissage do la coupole.

FiG 15 à 19. — Idem. Spermatozoïdes; formes diverses. FiG. 20 à 23. — Idem. Spermatozoïdes dans l'e-xlrémiLé inférieure du

canal déférent.

FiG. '24 et 25. — Idem. Liqueur de Ripart. Dissociation dans le carmin aluné étendu.

Deux formes de spermatozoïdes.

FiG. 26. — Idem. Liqueur de Ripart et Petit. P'uchsine acide. Dissociation.

Deutospermatoblaste avec grande vésicule, crépissage, et orientation en méridiens des grains chromophiles du contenu de la vésicule.

FiG. 27. — Idem. Deutospermatoblaste avec deux vésicules présentant

les mêmes caractères que celle delà fig. 26. FiG. 28 cà 31. — Idem. Liqueur de Ripart. Carmin aluné dilué.,

Diverses formes de spermatozoïdes.

Fig. 32 à 37. — Idem. Liqueur de Ripart. Carmin aluné et vésuvine. Dissociation.

Diverses formes de spermatozoïdes.

Fig. 38 à 42. — Idem. Liqueur de Ripart et Petit. Hématoxyline et éosine.

Diverses formes de spermatozoïdes. Obj. apochromat. 0'""*.4 de Zeiss.

Fig. 43 à 50. — Idem. Liqueur de Ripart et Petit. Dissociation d'un cul-de-sac testiculaire dans la glycérine hématoxylique de Renaut.

Diverses formes de spermatozoïdes.

Fig. 51 à 56. — Idem. Liqueur du Ripart et Petit. Dissociation dans une solution diluée d'hématoxyline.

Spermatozoïdes pris dans le canal déférent. Object. apochr. 0""",4 de Zeiss.

382 A. SACATIER.

FiG. 57 et 58. — Pagurus striatus du 22 février. Liqueur de Ripart et acide osmique à I 7o» parties égales. Vert méthyle acétique.

Deux protospermatoblastes avec Nebenkôrper et granules chromophiles et réfringents nombreux dans le protoplasme sur le trajet des filaments du réseau protoplasmique. Les gros Nebenkôrper sont formés par l'agglomération des petits grains. Isucléine périphérique et en partie irradiée. Cellules se préparant à la oinèse. Les cellules semblables sont nombreuses chez le sujet.

Fig. 59 à 72. — Pagurus striatus du 14 décembre. Liqueur de Ripart et Petit. Vert méthyle acétique. Dissociation. Diverses formes de spermatozoïdes.

Obj. 10 à immersion de Prasmowsky.

Fig. 73 à 81. — P. striatus du 2 mars. Liqueur de Ripart et Petit et acide osmique à 1 %• Vert méthyle acétique. Diverses formes de spermatozoïdes.

Fig. 82 à 85. — P. striatus de janvier. Liqueur de Ripart. Vert méthyle acétique.

Spermatozoïdes dont deux avec manchon hyalin. Fig. 86, 87, 88. — P. striatus. Sublimé et acide acétique 10 7o. Dissociation dans éosine héraatoxylique de Renaut. Deutospermatoblastes passant à l'état de spermatozoïdes. Grandes vésicules dune couleur plus bleue que le noyau. (Couleurs mal rendues par la planche) .

Fig. 89 à 92. — P. striatus. Sublimé et acide acétique à 10 Vo* Hématoxyliae de Delafield diluée, et puis éosine. Spermatozoïdes où la vésicule, d'abord violette ou bleue, est devenue rose par le dépôt du crépissage. Fig. 93. — Idem, Coupe de la vésicule avec son contenu granuleux rétracté.

Les grains sont violets et se déposeront sous forme de crépissage. FiG. ?i. — Idem. Spermatozoïde et manchon hyalin. Fig. 95. — Idem. Même explication que pour fig. 93. FiG. 96 à 100. — P. striatus. Spermatozoïdes après cinq jours de traitement dans une solution de chlorure de sodium à 10 %. et lavage dans le vert méthyle acétique. La nucléine s'est en partie dissoute. FiG. 101 et 102. — IdeJii. Spermatozoïdes après quarante-huit heures de traitement dans une solution de chlorure de sodium à 10 "/o ; puis lavage au vert méthyle acétique.

FiG. 103. — Ideyn. Deuiospermatoblasle après le même traitement.

Le graveur a trop accentué les grains de chromatine. FiG. 105 à 107. — Pagunisstriatus. Liqueur de Ripart et Petit. Vert méthyle acétique.

Formes diverses de spermatozoïdes et crépissage granuleux très évident en fig. 105 et 106.

Planche IX .

Fig. 1 à 9. — Eiipagurus Lucasii du 18 avril.

Liqueur de Kipart et Petit. Vert méthyle acétique. Diverses formes de spermatozoïdes avec grandes vésicules hypertrophiées.

La fig. 3 représente un état moins avancé et un noyau à nucléine granuleuse.

Fig. 10 à 15. — Eupagunis Lucasii du 22 décembre.

Mêmes réactifs. Spermatozoïdes d'une autre forme que les précédents.

Fig. 16 à 24. — Pagurisles maculatus du 13 février. Liqueur de Ripart

et vert méthyle acétique. Spermatozoïdes. Fig. 25 à 27. — Pag. miculalus du 29 mars. Liqu3ur de Ripart et violet de gentiane. Object. apochromatique 0'°"",4 de Zeiss. Fig. 28 à 34. — Pag. maculatus du. 21 avril. Liqueur de Ripart et vert

méthyle acétique. Spermatozoïdes.

Fig. 35 à 37. ^ Dlogenes va) ians du 23 mars. Liqueur de Ripart et violet de gentiane.

Spermatozoïdes. Obj. apoch. 0""»,4 de Zeiss. Diamètre 0,018. Fig. 38. — Idem. Deutospermatoblaste avec vésicule cà son début.

Obj. apoch. 0'°"^,4 de Zeiss. Diamètre 0,009. Fig. 39. — Diogenes varians d'avril. Sublimé et acide acétique. Alcools. Coupes. Coloration par la méthode de Bizzozero. Prolospermatoblaste avec fuseau et plaque équatoriale. Les séries de grains sont inégales quant aux dimensions des grains de nucléine. Il yadeu.\ séries successives de grains fins séparés par une série de grains gros. Le graveur a complètement méconnu et altéré ce caractère. Fig. 40 à 43. Idem. Spermatozoïdes se développant avec grandes vésicules à fins grains chromophiles. Les noyaux ont été repoussés et aplatis.

Fig. 43, 44. — Idem. Spermatozoïdes.

oS4 A SA BATI En.

FiG. 45à5û. — Diogenes varians du S lévrier. Liqueur de Rixjart et vert méthyle acétique. Spermatozoïdes.

FiG. 51 à63. — Dlogenes varians du 8 mars. Mêmes réactifs.

Spermatozoïdes. Les Sg. 60, 61, G2et63, représentent aussi les grands manchons hyalins.

FiG. 64. — Scyllarus ardus du 8 octobre. Liqueur de Ripart et vert méthyle. Deutospermatoblaste avec jeune vésicule.

FiG. 65 à 75. — Idem. Spermatozoïdes. Obj. O^'^ji apochromat. de Zeiss.

FiG. 76 à 78. — Idem. Spermatozoïdes. Apochr. à immersion 1°"°,25 de Zeiss. Spermatozoïdes.

FiG. 79 à 86. — Idem. Spermatozoïdes pris dans les spermatophores. 86 a été coloré par le carmin alané.

FiG. 87. — Idem. Spermatozoïde vu de face.

FiG. 88. — Palxmon serralus du 28 juin. Liqueur de Ripart et Vert méthyle.

Grand protospermatoblaste à l'état quiescent. Obj. apochr. 0°"",4 de Zeiss. Diamètre 0'"'",015.

FiG. 89, 90. — Pa/. 5errc[îu5. Liqueur de Ripart et vert méthyle acétique. Deu.x grands noyaux-germes se divisant par clivage.

FiG. 91 à 105. — Pal. serralus du 23 mars. Liqueur de Ripart et vert méthyle.

Spermatozoïdes pris soit dans les acini testiculaires (102 à 105) soit dans le canal déférent.

FiG. 106. — Pal. serralus du 8 mars. Sublimé et 10% d'acide acétique. Coupes. Safranine. Deutospermatoblastes observés dans les acini. Obj. 0'"", 4 apochr. de Zeiss.

FiG. 107 à 113. — Idem. Formes diverses de spermatozoïdes en développement dans les acini testiculaires. Obj. 1/16 de pouce à immersion homogène de Leitz.

FiG. 114 à 116. — /t/ewi. Spermatozoïdes parfaits dans le canal déférent.

FiG. 117 à 123. — Palœmon Treillianus du 16 septembre. Liqueur de Ripart et vert méthyle. Formes observées dans les culs-desac testiculaires.

FiG. 124 à 129. — Idem. Spermatozoïdes dans les culs-de-sac testiculaires.

FiG. 130. — Pa/.serr-/fu5du 8 mars. Sublimé et 10% d'acide acétique. Alcools. Coupes. Safranine.

Deutospermatoblaste avantsa transformation en spermatozoïde.

FiG 151. — Idem. Groupes de spcrmatoblastcs plongés dans le protoplasme caduc. Leur protoplasme propre se distinguait à

SPEIt.MATOGENESE CHEZ LES CRUSTACÉS DÉCAPODES. 385

peine, soit qu'il eût été contracté par les réactifs, soit qu'il fût masqué par le protoplasme caduc.

FiG. 132 h 134. —Idem Formes observées dans les tubes testiculaires. FiG. 135 et 136. — Pal. sermlus au 8 mars. Sublimé et 10°/o d'acide acéLi>iae. Alcools. Coupes. Héraato.xyline diluée, et ensuite solution aqueuse d'éosine.

Spermatozoïdes. Obj. apochr. 0'"'",4 de Zeiss, FiG. 137 à 146. — Pal. Treillianus. Liqueur de Ripart et vert méthyle. Dissociation.

Spermatozoïdes. Obj. apochr. 0""",4 de Zeiss. FiG. 147 à 149. — Pal. servatus. Liqueur de Ripart et Petit. Vert méthyle acétique d'abord, brun bismark ensuite. Spermatozoïdes.

FiG. 150 ù 158. — Pal. Treillianus du mai. Sublimé et 5 % d'acide acétique. Alcools. Coupes. Coloration par la méthode de Bizzozero.

Spermatozoïdes de diverses formes et à divers degrés de développement, pris dans les canalicules testiculaires. Obj. 1/16 de pouce à immersion homogène de Leitz. FiG. 159 à 166. — Pal. serratus du. 8 mars. Liqueur de Ripart et vert méthyle. Dissociation.

Spermatozoïde pris dans le canal déférent. Obj. 0'",4 apochr. de Zeiss.

FiG. 167. — Idem. Deutospermatoblastes.

FiG. 168 à 178. — P. serratus du 29 mars. Liqueur de Ripart et vert méthyle.

Spermatozoïdes de diverses formes.

FiG. 179 à 188. — P. serratus du 29 mars. Liqueur de Ripart et violet de gentiane.

Spermatozoïdes de diverses formes. Obj. apochr. 0'"", 4 de Zeiss.

Planche X.

FiG. I à 12. — Palxmon serratus du 22 février. Liqueur de Ripart et Petit et acide osmique à 1/100. Vert méthyle acétique. Spermatozoïdes de formes diverses. Obj. 0'^'n,4 apochr. de Zeiss.

FiG. 13 à 19. — Pal. serratus du 14 mai. Mêmes réactifs.

Spermatozoïdes divers. Obj. à immers, homog. 1/16 pouce do Leitz.

386 A. PABATIER.

FiG. 20 à 23. Pal. Treilliamis du 17 novembre. Liqueur chromoacéto-osmiquede. Fleniming. AU ools. Coupes. Carminaluné. Spermatozoïdes en A'oie de développement. Vésiculisatiou et décoloration progressive de la nucléine.

FiG. 24 et 25. — Pal Treillianus du 8 octobre. Liqueur de Ripart et vert méthyle acétique. Dissociation.

Deux spermatozoïdes en développement pris dans les canalicules testiculaires. Obj. apochr. à immersion 2,5 de Zeiss. FiG. 26 à 29. Pal. Treillianus du 8 octobre. Liqueur de Ripart, etaprès lavage, fuchsine acide. Dissociation. Spermatozoïdes dans les canalicules testiculaires. Oly. apochr. à immersion 2,5 de Zeiss.

FiG. 30 à 36. — Pal. Treillianus du 8 octobre. Liqueur de Ripart, et après lavage carmin aluné. Dissociation.

Spermatozoïdes pris dans les canalicules. FiG. S7 et 38. — Pal. Treillianus du 39 novembre. Liqueur de Ripart et après lavage violet de gentiane. Dissociation. Spermatozoïdes dans les canalicules. Vésiculisatiou et orientalion de la nu oléine.

FiG. 39 à 41 Pal. Treillianus du 17 novembre. Liqueur chromo-acétoosmique de Flemming. Alcools. Carmin aluné. Coupes. Spermatozoïdes avec vésiculisatiou et décoloration de la nu-

cléine, pris dans le canal déférent.

Obj. apochr. 2,5 à immersion de Zeiss.

FiG. 42. — Idem. Représente à un plus fort grossissement l'aiguille du spermatozoïde. C'est par erreur que le graveur a placé une traînée rouge dans l'aiguille au-dessus des vésicules. Ces dernières sont faiblement colorées; l'extrémité de l'aiguille qui les surmonte est incolore.

FiG. 43 à 46. — Pal. Treillianus du 29 novembre. Liqueur de Ripart, et, après lavage, violet de gentiane faible. Spermatozoïdes dont l'un a 2 pointes. Yésiculisation et décoloration de la nucléine. Obj. apochr. 2, 5 à immersion de Zeiss. Ocul. compensateur 8.

FiG. 47 h 53. — Pal. Treillianus du 8 novembre. Sublimé et 5 7o d'acide acétique. Alcools. Coupes. Carminaluné. Spermatozoïdes pris dans le canal déférent et eniourcs d'un

liquide spumeux qui remplit le canal.

Décoloration de la nucléine.

Obj. à immers, homog. 1/12 de pouce de Zeiss.

SPEr.MATOGENÈSE CHEZ LE-- CRUSTACÉS DÉCAPODES 387

FiG. 54 et 55. — Pal. Treillianus du 17 novembre. Liqueur chromoacéto-osmique de Flemming. Alcools. Coupes. Carmin aluné .

Spermatozoïdes avec protoplasme vésiculaire ou réticulé. Vésiculisation et décoloration de la nucléine. -FiG. 56. — Idem. Dissociation dans la gélatine glycérinée.

Spermatozoïde observé avec l'obj. 0™'^,4 à immersion de Zeiss. FiG. 57. — Idem. Spermatozoïde dont on n'a dessiné que l'éminence

protoplasmiqne vésiculeuse ou réticulée.

FiG. 58. — Pal. Treillianus du 16 septembre. Sublimé et 5 % d'acide acétique. Alcools. Coupes. Hématoxyline.

Deutospermatoblastes avec grande vésicule et nucléine refoulée

eu un gâteau ou disque concavo-convexe.

Obj. 1/16 de pouce à immers, homog. de Leitz. FiG. 59 et 60. — Pal. Treillianus du 29 novembre. Liqueur de Jrlipart et Petit. Après lavage, violet de gen tiane. Dissociation . Spermatozoïdes avec vésiculisation et orientation de la nucléine. Obj. apochr. à immersion 2,5 de Zeiss.

FiG. 61 et 62. — Idem. Spermatoblastes commençant à se transformer en spermatozoïdes. Dans la fig. 62 on voit la vésiculisation commençante de la nucléine.

Fig. 63. — Pal.serratus du 14 mai. Liqueur de Ripart et vertméthyle. Spermatozoïde. Décoloration partielle et totale delà nucléine. Fig. 64 à 66. — Pal. Treillianus du 8 novembre. Liqueur de Ripart et vert métbyle.

Spermatozoïdes de formes diverses.

Fig. 67. — Pal. Treillianus du 8 novembre.

Sublimé et acide acétique. Carmin aluné et carmin d'indigo. Nucléine rose ; cytoplasme réticulé en bleu. Fig. 68. — Pal. Treillianus du 17 novembre. Liqueur chromo-acétoosmique de Flemming. Alcools. Coupes. Carmin aluné. Protospermatoblastes avec corps nucléinés en cordon se fragmentant. Obj. apochr. 0,4 Zeiss. Diamètre, 0°"°, 03. Fig. 69. — Idem. Spermatozoïde. Vésiculisation et décoloration de

la nucléine.

Fig. 70. — Pal. Jm/^ianvi du 22 novembre. Liqueur de Flemming. Alcools. Coupes, Carmin chlorhydrique.

Protospermatoblaste à l'état quiescent.

Obj. apochr. à immersion 2,5 de Zeiss.

388 A. sabatier.

FiG. 71 à 74. — Pal. Treillianus da 22 novembre. Liqueur de Flemming. Alcools. Coupes. Carmin chlorhydrique. Spermatozoïdes pris dans les canalicules tesliculaires. Vési-

culisation, orientation et décoloration de la nucléine. Obj. apochr. à immersion 2,5 de Zeiss. FiG. 75 et 76. — Pal. Treillianus du 17 novembre. Liqueur de Flemming. Alcools. Coupes. Carmin aluné.

Spermatozoïdes avec vésiculisation, orientation et décoloration de la nucléine. Pris dans les canalicules tesliculaires. FiG. 77 à 81. — Pal. Treillianus du 8 octobre. Liqueur de Ripart. Après lavage, carmin aluné dilué et enfin vésuvine. Spermatozoïdes. Obj. apochr. 0,4 de Zeiss. FiG. 82. — Idem. Eosine. Spermatozoïde.

FiG. 83 et 84. — Idem. Comme fig. 77 à 81.

FiG. 85, 86, 87. — Asiacus fluviatilis du 4 septembre. Pris en liberté. Liqueur do Ripart et Pedt. Vert mélhyle. Dissociation . Trois protospermatoblastes en voie de cinèse, avec corpuscules

paranucléaires réfringents et chromophi'es. Les cellules semblables étaient très nombreuses dans la préparation.

Fig. 88 et 89. — Idem. Deutosp^^rmatoblastes avec vésicule encore

jeune.

FiG 90 à 96. — Autre Astacus du 4 septembre. Pris en liberté. Mêmes

réactifs. Spermatozoïdes en voie de développement. Fig. 97 et 98. — Asiacus du 8 août. Pris en liberté. Mêmes réactifs. Protospermatoblastes en voie de cinèse avec corpuscules paranucléaires réfringents et chromophiles.

Fig. 99. — Idem. Spermatozoïde en voie de développement. Fig. 100 à 104. — Eupagurus angulalus du 28 février. Liqueur de Ripart et vert méthyle. Dissociation.

Spermatozoïdes de formes diverses et à divers degrés de développement.

Fig. 105. — Dccticus albifrons de juin. Sublimé et 1 7o d'acide acéliijue. Alcools. Coupes. Caruiiu aluné. Deu.x deutospermatoblastcs avec vésicule encore jeune. Noyaux réticulés avec beau nucléole.

Obj. à immersion apochr. 2,5 de Zeiss.

Fig. 106. — Locusta viridissiniu de juin. Mêmes réactifs.

Spermatozoïde en voie de développement. Obj. 1/18 pouce à immersion homogène de Zeiss.

FiG. 1U7. — Idem. Noyau et vésicule d'un spermatozoïde semblable

isolés dti cytoplasme.

FiG. 108 à 110. — Decùicus albifrons. Mêmes réactifs.

Spermatozoïdes avec vésicule plus avancée et avec vésiculisa-

tion de la nucléine du noyau.

FiG. 111 et 112. — Declicus albifrons. Liqueur de Kipart et Petit.

Après lavage, hématoxyliue très diluée et glycérine. Spermatozoïdes avec vésicule et avec vésiculisation de la

nucléine du noyau.

FiG. 113 et 114 — Idem. Deux spermatozoïdes oîi la vésicule cépha-

lique s'est allongée en ovoïde ou trapézoïde,etoùles vésicules

de nucléine du noyau commencent à former la coiffe cépha-

lique.

FiG. 115, 116, 117. — Declicus griseus. Liqueur de Ripart et Petit.

Vert méthyle acétique.

Spermatozoïdes avec des degrés divers de vésiculisation de la

nucléine du noyau. Obj. 2,5 apochr. à immersion deZeiss. FiG. 118 et 119. — Idem. Mêmes réactifs. Deux spermatozoïdes avec

coitfe céphalique déjà formée et crépissage accentué de la

vésicule céphalique vue de face.

FiG. 120. — Idem. Un spermatozoïde vu de champ. FiG. 121 à 127. — Locusla veridissima. Sublimé et 1 °/o d'acide acétique. Hématoxyline et éosine.

Spermatozoïdes à divers degrés de développement. FiG. 128 et 129.— Idem. Têtes et coiffes céphaliques de spermatozoïdes

complètement développés.

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Montp. — Typogr. Charles Boehm.

Extrait des Mémoires de rAcadémie des Sciences et Lettres de Montpellier (Section des Sciences. — 2« série, tom. I, 1893)

Montpellier. — Typ. C'<AnT.FS BnrHM.