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les Heterophyes, de très petite taille, sont dissimulés dans les villosités intestinales et se voient difficilement ; il faut racler la muqueuse avec un scalpel et diluer le produit de raclage dans l’eau.

Les matières fécales s’examinent également en les diluant dans l’eau. Si elles ‘sont de consistance dure, on les malaxe avec un bâton.

Le foie s'examine par ouverture des canaux biliaires. On pratique des coupes au couteau dans l'organe et l’on comprime : les douves sortent de la section des canalicules bilaires. Les petites douves sont peu visibles dans la bile de couleur foncée, il faut étaler ce liquide sur une plaque de verre.

Les oiseaux sont autopsiés en introduisant des ciseaux par l'anus et en prolongeant l’incision jusqu’au bréchet. On coupe les côtes de chaque côté du sternum qui est récliné en haut. Les cavités nasales, oculaires, les sacs aériens, la trachée et les poumons peuvent contenir des trématodes, notamment des Cyclocælidæ.

Les reptiles et Îles batraciens sont dépouillés, de façon à voir les métacercaires sous-cutanées qui peuvent s’y trouver. L'unique poumon fonctionnel des serpents se prolonge dans la partie postérieure du corps; on aura soin de bien le séparer de l'intestin.

Les poissons hébergent sur leurs branchies des trématodes monogénétiques ; on cherchera des métacercaires dans les yeux et sous les écailles.

Les trématodes récoltés, on les examine, s'ils ne sont pas trop épais, à l'état frais, encore vivants, entre lame et lamelle dans une goutte d’eau. Ce premier examen donne souvent de très précieux renseignements et permet de voir des détails qu’on ne retrouvera plus après la fixation. TI importe de ne jamais l'oublier. On devra prendre un bon dessin du ver à la chambre claire.

Cependant, pour avoir des préparations permanentes, il est nécessaire de fixer et de colorer les trématodes. Pour cela on Îles étend en bonne position sur une lame de verre. S'ils sont petits et fragiles, on recouvre simplement d'une

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lamelle ou d’une autre lame, plus lourde, et l’on fait pénétrer entre les deux un fixateur, soit l’alcool-formol : alcool à 95°, 9 parties, formol du commerce, I parte.

s'il s’agit de gros trématodes, on peut les fixer entre deux lames qu’on serre au moyen d’un fil. Mais quelque soit la technique employée, il faut n’exercer qu'une très légère pression ; en comprimant à l'excès on risque de faire éclater le ver ou de déplacer des organes, notamment les testicules. Bien des déterminations erronées et de soi-disant espèces nouvelles n’ont d'autre origine qu’une fixation défectueuse. La durée de la fixation varie avec la taille et l'épaisseur du ver. Îl n’y a pas d’inconvénient à la prolonger, douze à vingt heures suffisent largement pour la grande douve du foie.

Le trématode fixé doit être coloré. Après avoir été lavé à l'alcool on pourra utiliser un colorant alcoolique (carmin chlorhydrique ou le descendre à l'eau pour employer un colorant aqueux (carmin aluné, hémalun). Les petits trématodes, peu musclés et transparents, se laissent facilement colorer par n'importe quel réactif ; pour les vers épais, c’est un peu plus difficile, le carmin D donne peut-être les meilleurs résultats, l'alcool pénétrant plus facilement. La différenciation du carmin chlorhydrique se fait à l'alcool chlorhydrique (quelques gouttes d'acide chlorydrique jaune du commerce de préférence au produit chimiquement pur, dans un verre de montre rempli d'alcool). On déshydrate et on monte au baume du Canada par les techniques habituelles.

Les trématodes très épais ne peuvent fs’étudier que par coupes, ce qui est beaucoup plus compliqué. Ces coupes se font à la paraffine suivant les techniques histologiques habituelles. Elles doivent se débiter en série et l’on reconstitue l'animal après l'examen successif des coupes. Cette méthode ne sera pas employée pour les trématodes que nous décrivons dans notre travail. :