II. Coloration des covjm

1° Colorer dans la safranine à l'eau d'aniline, 2i à i8 heures.

2° Laver soigneusement dans Teau.

3° Colorer à l'hématoxyline, 1/2 à une minute.

4° Laver soigneusement dans l'eau.

o° Colorer dans la solution de violet de gentiane anilinée, 1 /2 à 3 heures. 6" Laver dans la solution de sel marin à 0. G 0/0. 7*» Baigner dans la solution iodo-iodurée (1 : 2 : 300), 2 à 5 minutes. 8° Sécher sur spatule à l'aide de papier à filtrer.

9° Décolorer dans l'huile d'aniline, jusqu'à ce que la coupe ne cède plus de couleur.

10° Colorer dans l'éosine anilinée, 1/2 heure.

11° Enlever l'huile d'aniline dans le xylol; baume de Canada.

La zone centrale devient bleu sombre, les cellules pyriformes rouge brunâtre, les noyaux des cellules violets et le protoplasma violet rose.

La MÉTHODE DE France, consistant à colorer pendant 24 heures, fournit aussi de bons résultats ; mais sa valeur est inférieure à celle de la méthode de Weigert, parce que la celloïdine est dissoute dans l'alcool absolu et que souvent la zone centrale disparaît en partie.

Méthode de Bostroem :

1° Coloration par le violet de gentiane à l'eau d'aniline. 2° Bain direct, sans lavage préalable, dans le picro-carmin de Weigert. 3° Lavage soigné dans l'eau.

4° Bain d'alcool et dissolution de violet de gentiane jusqu'à coloration rouge jaunâtre des coupes.

EXAMEN DES MICROBliS

La partie fibrillaire de la masse reste paie, tandis que la zone périphérique devient rouge et le tissu environnant rouge jaunâtre.

La section des grains d'actinomyce fournit de bons résultats lorsqu'on inclut soigneusement à la paraffine.

On peut naturellement en faire des pré])arations sèclies sur couvreobjet et les colorer comme les coupes.

On a imaginé un grand nombre de méthodes de recherches en coupes; jnais les préparations ne sont généralement pas stables, et les différentes parties du champignon, mycélium et conidies, se colorent souvent d'une façon différente dans la même coupe.