Structure de la zone de moindre résistance

Les Crangon ne rompent que très difficilement leurs pattes, même leurs grosses pinces, lorsque l’on opère une traction violente; jamais ils ne se débarrassent du tronçon de patte restant lorsque l’on blesse la partie distale de l’appendice. Quand la cassure se produit, à la suite d'une traction suffsamment forte, ce n’est pas toujours rigoureusement au même niveau; aussi, j'entends par ! plan de moindre résistance ", chez les Crangon, le niveau auquel la rupture se produit dans la majeure partie des cas.

L'examen des coupes permet de constater que, si ce niveau semble bien être morphologiquement le même chez C. crangon et L. serratus, la structure interne de la région du plan de moindre résistance est assez différente chez les deux espèces. Chez Leander, en effet, en plus des nerfs et des vaisseaux, je n'ai rencontré qu'un tissu conjonctif disposé en lamelles et dont la coupe figure un réseau. Chez Crangon, il y a aussi, à certaines places de la région correspondante, un tissu conjonctif de même structure, mais, en outre, la rupture laisse toujours béants de vastes sinus sanguins. Dans le plus important de ces derniers, se trouve une lamina qui s'insère en partie sur le pourtour des nerfs et en partie sur la paroi du basipodite. Une portion, seulement, de cette lamina est libre et pend dans le sinus dont il vient d’être question (PI. 3, fig. XX). Cette lamina conjonctive fonctionne comme une véritable valvule, elle permet le passage du sang de la région distale vers l'insertion de l’appendice mais elle forme clapet et s'oppose au passage du sang en sens : inverse. C'est ainsi qu'après la chute de l’appendice on voit la partie libre de la Zamina (PI. 3, fig XXI) intimement appliquée contre la paroi du moignon,

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2. — Cicatrisation et étude de la formation du régénérat au plan de moindre résistance.

J'ai dit plus haut qu'au moment de l’amputation, la plus grande partie de la surface de section est oblitérée par la lamina. Le reste de la surface est obstrué par les nerfs et par les mailles du réseau conjonctif. Ainsi l'hémorragie est à peu près nulle et la faible quantité de sang qui suinte à la surface forme un léger caillot (PI. 3, fig. XXI). Pendant les heures qui suivent, les cellules sanguines s'accumulent dans la région lésée, de façon à constituer un bouchon cicatriciel tout autour de l'extrémité des nerfs qui restent longtemps à nu. Ce bouchon englobe une plus ou moins grande portion de la /amina dont la partie libre flotte à nouveau dans le sinus principal (PI 3, fig. XXI). Le bouchon cicatriciel continue à s'épaissir jusqu'à la 5° ou 6° heure qui suit l’amputation. À partir de ce moment, les cellules du bouchon s'écrasent les unes contre les autres, s'aplatissent et se disposent en strates. Les couches les plus externes dégénèrent pour former une membrane cicatricielle. Presque toutes les cellules se chargent de mélanine, cela explique pourquoi la surface cicatricielle est toujours très noire, déjà au bout de quelques heures. Après 6 heures, environ, il commence à se constituer une lacune sous-cicatricielle (PL 4, fig XXV). Au bout de 16 à 20 heures, les cellules hypodermiques très voisines du bord de la lésion subissent les mêmes transformations qui ont été décrites plus haut dans le cas des Leander. Par la suite. ces cellules se détachent de la chitine et se déplacent pour former l’hypoderme cicatriciel. Il m'a bien semblé, cependant, que, chez Crangon, les cellules hypodermiques ne se déplaçaient pas en nappe continue, mais individuellement (PI. 4, fig. XXIV). Il est même probable, aussi, qu'il y a une émigration de cellules hypodermiques analogue à celle décrite par Daninl (1928) dans le cas de la "régénération !" de l’hypoderme chez l'Écrevisse Potamobius leptodactylus et que l'hypoderme des Crangon est un hypoderme simple comme GirouD l'a défini chez les Vers (1921).

Au bout de 48 heures, seule l'extrémité des nerfs est encore à nu (PI. 4, fig XXV). L'hypoderme cicatriciel est entièrement constitué après 50 à 55 heures. À partir de ce moment, entre les cellules hypodermiques, il s’insinue un grand nombre de cellules qui me paraissent bien être des globules sanguins. Ces derniers évoluent très rapidement : une partie de ces cellules dégénèrent, tandis que les autres s’enflent, le noyau grossit fortement, devient sphérique mais reste longtemps très chromatique. Il ne

m'a pas été possible de suivre plus loin leur évolution car au bout de quelque temps, leurs noyaux ne se distinguent plus de ceux des cellules hypodermiques (PI. 4, fig. XXVI). À ce moment commence aussi la sécrétion de la chitine qui vient doubler intérieurement et renforcer la membrane cicatricielle.

Vers la 60° heure, l'hypoderme ancien commence à se décoller de la chitine du moignon. Ce phénomène ira en s’accentuant par la suite.

Au bout de trois jours, les premières mitoses apparaissent dans l'hypoderme. Le 4° jour, toute la partie ancienne de l'appendice est décollée à l'intérieur du moignon, jusqu’à l'insertion même de l’appendice (PI. 4, fig. XXVID. L'organisation interne s'effectue grâce à de nombreuses mitoses, mais il apparaît nettement aussi que tous les tissus anciens de l’appendice sont remaniés. Le bourgeon se développe à l'intérieur de Ja chambre constituée par la chitine du moignon et par la membrane cicatricielle. Cette chambre est pleine d’un liquide visqueux, analogue à celui qui sépare l’ancienne chitine de la nouvelle, un peu avant la mue (PI. 4, fg. XX VII.

La différenciation des muscles commence vers le 6° jour, à partir de cellules sanguines, mais les fbrilles musculaires ne sont sidérophiles et nettement striées que vers le 8° jour. À ce moment aussi se place la

différenciation des glandes tégumentaires.