ETUDE DE QUELQUES MUCORINÉES
Dans tous les cas nous avons utilisé la méthode de culture directe avec NONH* comme source d’azote. Nous opérions généralement en faisant 3 séries ajustées à des pH différents.
Nous avons d’abord préparé la solution mère suivante :
Nitrate d’ammoniaque recristallisé. 8 gr.
| Citrate de soude recristallisé ...... 20 gr. ; Ghloruresde soditme 7 207 20 gr.
te OUDIes Ghicose DID RASE TASER 50 gr.
| Constante minérale eme r 90 gr.
Éaunbidisillée PRE REC RER 500 gr.
Nous avons ensuite ajusté ce milieu à 3 séries de pH diffé rents, à l’aide soit de la soude N/10 soit de l’acide chlorhydrique N en suivant les indications suivantes :
Milieu N° 1.
DS) OITITLOD EM ETC PR EE 110 ces HELENE RS RE as ee 24 co FausDbidistilée#qes@Dm 2" 220 gr.
Milieu N° 2.
SALON EMETE ARR RME PR ee 110 cc:
La 0 NN RP ER Ve A 10 ccë Fauthidishiké dep ee. 220 gr.
Milieu N° 3.
SOIUTION: INÉEE EE 110 cc:
NAaOH-N/10 mere 5 oc$
Eattbidistillée tes be 0 220 er.
Nous obtenons ainsi 3 séries de milieux différents, les deux premiers correspondant à la zone acide, le troisième étant voisin de la neutralité (1). Les liquides ont été répartis à la pipette dans des fioles d'ERLENMEYER à raison de 25 cc? par fiole que lon stérilise.
On ensemente largement à l’aide d’une émulsion de spores. On porte à l’étuve une série de fioles pour chaque pH et on retire les fioles à intervalles réguliers.
EXPÉRIENCE N° 33. — MucOR CIRCINELLOIDES.
Milieu habituel au NONH. On utilise trois séries ajustées à différents pH. Le dosage d’un fiole témoin a donné les résullats portés au tableau 53.
Série N. ammoniacal N. nitrique pH 1 39 39 3.22 2 30 39 5,19 3 30 35 6,83
On retire les fioles les 4°, 7° et 14° jours.
Les résultats consignés au tableau 54 montrent que le Mucor circinelloides n’a pas poussé très vigoureusement sur ce milieu nitraté puisque la récolte fut nulle presque jusqu’au 14° jours dans la série 1 et très faible dans les deux autres. Par ailleurs, le mycélium a gardé un poids stationnaire entre le 7° et le 14 jour. Il a utilisé l’azote ammoniacal dans les trois séries, mais n’a pas consommé N/NO%K dans la série la plus acide, se contentant de l’attaquer faiblement dans les autres séries. La disparition de NO“ est surtout nette dans la série 2.
A une forte acidification a succédé une stabilisation les 7° et 14° jours.
(1) On a pris chaque fois le pH après la stérilisation afin d’obvier aux erreurs dûes aux variations de la réaction du milieu après passage à l’autoclave.
Bt «ne
Culture directe de M. Circinelloïdes sur milieu N/10 en NO3NH: ajusté à 3 pH différents.
p H Mycélium Azote ammoniacal Azote nitrique initial séries jours en pH ——— — — grammes résiduel disparu résiduel disparu
4 pointsbl. 2.33
do 747 1 7 0 025 2.18 27.64% 1230 3404 0.36 14 0.052 DAY T0 27.64 7.30 34.92 0.08 4 0.092 3.64 20.60 14.40 0912 1.88 5.10 w fl 0.141 3.38 13.04 91 .96 34.88 12 14 024975 4%:61 18.16 16.84 34.60 0.60 4 0.988 4.48 16.84 18.16 34,72 0.28 6.83 3 7 0.198 4.59 10 96 24.06 33.84 1.16 14 0.129 5.81 12.68 29,02 26 %592 0 EXPÉRIENCE N° 34. = MUcOR CORYMBIFER.
Milieu habituel au NONH, ajusté à 3 pH différents. Les dosages des témoins sont relevés au tableau 55.
TABLEAU 55 Séries pH N. ammoniacal Azote nitrique 1 2.23 34.72 34.84 2 5.19 34.13 35.48 3 6.83 31.08 35.36
L'examen des résultats (tableau 56) montre un développement assez faible du mycélium.
Consommation d’azote ammoniacal et légère attaque de lion NO* surtout dans les séries 2 et 3.
Après avoir subi une acidification le milieu revient dans une zone plus alcaline.
Culture directe de Mucor corymbifer sur milieu N/10 en NO:NH: ajusté à 3 pH différents.
P te Cemps Mycélium Azote ammoniacal Azote nitrique initial Séries en en pH ——— a Jours grammes résiduel disparu résiduel disparu 4 pts blancs Sp) 1 CNRS J4 0.005 DANSE "60 1.16 34.52 0.32 0:2585 3:55 Je 25.01 34.24 1.24 AU 9 RU To RAI: 00 Nils 031,45 1 14 0.2515 4.86. 12.84 21519 34.72 0.76
