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En utilisant un solvant de la folliculine, lui-même soluble dans le milieu carbonaté, on peut entraîner l’œstrone en solution et établir une courbe d'étalonnage : on peut utiliser, au maximum, 1 cm* d'alcool éthylique ou 5 cm* d’acétone pour les 10 cm° de réactif; au delà, il se produit un précipité blanc.

Cependant, ce réactif est vraiment peu spécifique des œstrogènes.

IL existe encore bien d’autres réactions; mentionnons, pour mémoire :

1° La méthode de SArA, utilisant la fluorescence verte dué à l’action de SO.H, à chaud, sur la folliculine;

2° La technique de PETIT (dosage de quelques aldéhydes et cétones par la nitrophénylhydrazone) ;

3° La méthode de KEEINER : la folliculine, comme tous les phénols, donne, avec l’anhydride phtalique, une substance colorée. ;

Nous n’avons pas étudié ces dernières réactions.

GONCLUSIONS

Il existe un grand nombre de réactions colorées suffisamment spécifiques, permettant de caractériser les œstrogènes. Parmi toutes ces réactions, nous retiendrons particulièrement celle de BACHMAN, qui nous a paru fidèle et constante dans sa simplicité.

Nous avons proposé une nouvelle réaction, mettant en jeu le réactif au méthyl-glyoxal de DENIGÈS, qui présente sur les autres l’avantage de se produire à la température ordinaire et immédiatement.

La plupart des réactions colorées conviennent fort bien lorsque l’on opère un dosage sur un produit pur. Il n’en est plus de même, malheureusement, lorsque l’on a affaire à un extrait urinaire impur, des colorations parasites venant masquer la réaction essentielle.