V. — Examen de la sédimentation des kystes

et des œufs.

Pour cet examen, une parcelle du culot est placée sur une lame, diluée dans une goutte de solution physiologique, recouverte d’une lamelle et examinée sans coloration.

Dans l'examen direct des matières fécales, le champ du microscope montre une variété de débris et de formes dans lesquelles il est souvent difficile de se reconnaître ;

dans le champ de la préparation faite avec le collectement, au contraire, nous ne trouvons plus que quelques gros débris : des fibres musculaires ou conjonctives, des fibres élastiques, des débris cellulaires végétaux et des kystes d’Amibes ou de Flagellés, des oocystes de Sporozoaires, des œufs d’Helminthes.Le mucus, les graisses,tous les petits débris alimentaires et la majeure partie des Bactéries ont été séparés et, de ce fait, la préparation devient plus nette et la différenciation des objets plus facile. L'examen direct ne peut être supprimé, car il permetseul de trouver les Protozoaires adultes et les éléments organisés (leucocytes, hématies, cellules) du tube digestif dans son fonctionnement normal ou pathologique. Mais l'examen après application de notre technique de simili-homogénéisation est indispensable pour retrouverles kystes et les œufs des parasites, quisont quelquefois très rares : seul, il permet leur examen détaillé et leur

différenciation.

COLORATION. — On a conseillé la coloration pour rechercher les kystes amibiens dans les selles.

SINTON, entre autres, dans les Annales de Médecine et de Parasilologie tropicales (éd. anglaise, 1912), indique une méthode qui permet d'obtenir en moins de deux minutes des préparations colorées de kystes d’Amibes.

1° Déposer au centre de la lame, avec un filde platine, une parcelle de matière fécale, l'étaler en couche mince.

20 Immédiatement et sans attendre la dessiccation, placer la lame, face enduite en bas, sur un petit cristallisoir renfermant une solution aqueuse d'acide osmique à 1 p. 100. Laisser la préparation s’imprégner pendant 30 secondes de vapeurs osmiques.

30 Retirer la lame et, sur le frottis toujours humide, verser une goutte d’hématoxyline à 1 p. 100.

4° Attendre quelques secondes, puis recouvrir d’une lamelle et comprimer légèrement pour chasser l'excès du liquide ; essuyer les bords avec du papier buvard.

Ce procédé est à retenir, sinon pour la coloration des kystes, du moins pour celle des Amibes dont la structure nucléaire est bien mise en évidence, ce qui permet de distinguer très facilement une Amibe limax d’une Entamibe.

Avec notre procédé de collectement,les kystes de Protozoaires se présentent bien isolés, avec une double membrane, des noyaux et des chromidies encore plus accusés après le traitement et, de ce fait, d’une diagnose facile.

Aussi nous n’employons et ne conseillons, pour cet examen,nulle coloration, sice n’est l’addition d’une gouttelette de Lugol dédoublé qui teinte en jaune les éléments ‘enkystés.

NI —‘Réactits.