COLORATIONS

Pour chaque point à examiuer, nous avons utilisé trois colorations différentes :

à l’hématoxyliné-éosine au safran ; et selon la technique de Mallory.

1° La coloration par l’hématoxyline-éosine permet déjà une appréciation assez exacte : densité du tissu fondamental, richesse en cellules, étude morphologique des cellules. Nous ne décrirons point cette technique utilisée couramment.

20 Mais l'élément fibrillaire conjonctif présente des caractères très variables correspondants à des stades d’organi-

sation différents, à des origines mêmes différentes. Le col-

DDR

lagène seul donne sa signification à la tumeur fibreuse, il impose donc l'emploi de colorations différentielles pour Île distinguer des autres aspects fibrillaires de la substance fondamentale.

La méthode de Mallory modifiée par le P'P. Masson nous paraît la meilleure à cet effet. Nous l’avons largement utilisée à cause des facilités qu’elle procure pour la lecture des préparations. Son seul inconvénient est quelle

exige une certaine habileté.

Elle comporte les temps suivants :

a) Colorer les noyaux à l’hématoxyline d’Heidenheim.

15 minutes d'abord dans l’alun de fer à 4 0/0 à chaud (45 à 50 degrés), laver rapidement à l’eau puis immerger pendant 15 minutes dans la solntion aqueuse d’hématoxyline à 1 0/0 portée à 40 degrés ;

b) Différencier en passant dans l’alun de fer à 2 0/0 à froid, puis dans de l’eau additionnée de 5 gouttes pour cent d'acide acétique (surveiller la décoloration au microscope) ;

c) Colorer 30 minutes dans une solution de Ponceau de xylidine à 1 pour 500 (solution dans l’eau distillée).

d) Plonger les coupes dans la solution suivante :

Acide phospho-molybdique . Dre 1 gr.

Ne eee lO OBS

Pauitstllées cho aier:

Ce réactif fixe le Ponceau de xylidine sur les cytoplasmes et l’enlève aux fibres collagènes : on le laisse agir 5 minutes et on porte ensuite les coupes dans le mélange suivant :

e) Solution aqueuse d'acide phospho-molybdique à 1 0/0 dans Peau distillée, Une partie.

x Fa

one

Solution aqueuse de bleu Poirier n° 2 à 1 0/0 dans l’eau distillée. Une partie. |

Préparer séparément les deux solutions. Colorer pendant 10 minutes, puis rincer à l’eau distillée.

f) Laver pendant quelques secondes dans l'alcool à 90 0/0 pour extraire le bleu qui imbibe le cytoplasme sans y être fixé.

g) Déshydrater à l’alcoo! absolu. Passer dans le xylol et monter au baume salicylé.

Résultats : les fibres collagènes et la substance fondamentale ou intermédiaire du cartilage se détachent en bleu vif avec la plus grande netteté. Les cytoplasmes, les fibres musculaires nerveuses, élastiques, en rouge ainsi que les réseaux de fibrine coagulés (Nageotte). La chromatine nucléaire est noire. Le +

3° On peut également recourir à la coloration au safran, qui comporte les temps suivants :

a) Colorer pendant 3 à 10 minutes par l’hématoxyline de Bühmer ;

b) Différencier par l'alcool acétique à 15 0/0. Laver soigneusement ;

c) Bleuir dans le carbonate de lithine à 1 0/0 pendant quelques secondes ;

d) Colorer fortement par l'éosine à 5 0/0 pendant 10 minutes, laver.

e) Couvrir la préparation avec de la solution de safran ; un quart d'heure de contact ;

f) Egoutter sans laver. Rincer rapidement dans l’alcoo!l absolu, monter la préparation et la conserver à l'abri de la

lumière.

Préparation du safran : déposer un gramme de safran du Gâtinais dans 100 grammes d’eau de source. Mettre au bain-marie à l'ébullition pendante 45 minutes,

Filtrer, ajouter 1 centimètre cube de formol à 40 0/0 et un centimètre cube de solution de tannin à Peau à 1 0/0.

N’utiliser qu’une solution récente, conservée dans un flacon jaune.

RÉSULTAT : les fibres conjonctives prennent électivement une teinte safranée.

Nous avons pratiqué sur les fibromes (les coupes en série très nombreuses, pour qu'aucun détail de structure ne nous échappât, et surtout pour acquérir une certitude quant à leur malignité éventuelle.

Les descriptious et les considérations qui suivent s’appuient sur l’examen de plusieurs centaines de prépara-

tions.

ÉTUDE DESCRIPTIVE DES FIBROMES NASO-PHARYNGIENS

Nous n’apportons point ici les observations histologiques détaillées de chaque fibrome. Elles se ressemblent à ce point que leur publication intégrale ressemblerait à une répétition assez- uniforme. Nous avons seulement choisi un certain nombre de coupes justificatives de notre description.

Nous devons toutefois attirer l'attention sur les points suivants : l

1° Les treize fibromes viennent de sujets du sexe masculin ;

2° L'âge des malades varie de 15 à 19 ans avec maximum de fréquence à 17 (9 fois) ;

3° Huit d’entre eux ont subi des interventions complémentaire au nombre de :

Une (4 fois) Deux (2 fois) Trois (2 fois) Quatre (1 fois)

4° Cliniquement, là majorité des pseudo-récidives n’ont

été découvertes que par l'examen de contrôle quelques se-

maines, ou peu de mois après l’intervention.