ERA

Tubes types Vernes : 5.

5 pipettes de 1 ce. graduées au 1/10 à large extrémité. Rhéomètre de Vernes de 1 ce. réglé à 0 ce. 25. Eau salée à 9 p. 1000.

Hématies de mouton : suspension à 2 %, Antigènes. Extrait de rein de cobaye. Extrait de globules de bœuf.

Préparation des antigènes

Elle se fait suivant le procédé indiqué par DAvipsonx. Nous l’avons signalé plus haut.

Réaction

Chauffer les sérums à expertiser 1/2 heure à 56°. Préparer les 3 dilutions des sérums à expertiser en eau - physiologique et avec chacun des antigènes. Pour cela prendre 3 tubes Vernes (75 x 10 mm.) ; mettre dans chacun d'eux 0 ce. 2 du sérum à expertiser inactivé et ajouter

Au 1° tube marqué A : Oce. 8 d’eau physiologique.

Au 2° tube marqué B : 0 ce. 8 de l’antigène globules de bœuf.

Au 3° tube marqué C: 0ce.8 de l’antigène rein de cobaye.

On aura eu soin — avant d'ajouter chacun des antigènes — de l’agiter et bien lhomogénéiser.

Chacune des dilutions au 1/5° B et © ainsi préparée sera laissée à la température du laboratoire pendant une heure et agitée toutes les quinze minutes.

Préparer 3 séries de 9, 12 ou 15 tubes de Vernes, étiquetées À, B, C, dans lesqueis on distribue au rhéomètre,

sauf dans le premier tube, 0 ce 25 d'eau physiologique.

Faire pour la série A (sérum pur) les dilutions du sérum en ajoutant au rhéomètre 0 ec. 25 de sérum dilué au 1/5 (tube A) dans le 1°" et le 2° tube. Après mélange on reporte 0 ec. 25 du 2° tube dans le 3° et ainsi de suite jusqu'au dernier tube dont rejette 0 ec. 25.

Ajouter dans chaque tube avee la pipette de 1 ec. graduée au 1/10, 0 ce { de Ja suspension de globules de mouton à 2 %.

L'heure écoulée, on centrifuge pendant 10 minutes à 1500 tours les tubes contenant les antigènes (extrait de globules de bœuf : tube B : extrait de rein de cobaye : tube C).

Prélever le sérum surnageant du tube B et le répartir (comme précédemment pour le sérum pur) dans la galerie B. Faire de même pour le sérum C qui sera réparti dans la galerie C.

Ajouter aux tubes des séries B et C 0 ce. 1 de globules de mouton dilués à 2 %.

Laisser à la température du laboratoire.

Lecture

Elle se fait classiquement après 2 heures. Notre Maître M..le Professeur SoHiER à proposé de la faire après ce délai mais aussi après 24 heures. Les agglutinations, ainsi qu'il a pu be vérifier sur de nombreuses réactions, apparaissent alors beaucoup plus nettement mais sans modifier notablement les taux trouvés lors de la première lecture, Une telle méthode est en particulier à recommander

lorsqu'on nest pas encore habitué à la lecture de la

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réaction.

La technique même d'examen des tubes est la suivante : le tube incliné avec précaution au-dessus d’un miroir concave et tenu entre le pouce et l'index est secoué d’un léger coup du 3° ou du 4° doigt venant frapper la partie inférieure du tube.

Ce procédé est surtout utile pour les agglutinines fines. On voit alors le eulot sédimenté des hématies se déliter en grains plus ou moins gros où en amas dans le liquide surnageant. La non-aggluiination au contraire se traduit par un déroulement en volutes d'aspect nuageux (fumée de tabac) dans le liquide. :

Les tubes une fois secoués de cette manière et de façon toujours égale à elle-même, sont ensuite remis en position verticale ; on apprécie alors le degré d’agglutination.

M. Soir évalue pour chacun d'eux l'intensité de la réaction de O0 à 4.

I1 donne le chiffre

4 Lorsque les hématies agglutinées forment un placard un ique. |

3 Lorsque les hématies sont agglutinées en gros grains réguliers dans un liquide élair.

2 Lorsque les hématies sont agglutinées en petits grains réguliers dans un liquide rosé.

1 Lorsque les hématies agglutinées ne sont visibles qu'au miroire concave.

0 En l'absence de toute agglutination.

On a pu dire que lagglutination forte en un amas unique était caractéristique de la M. T. En fait nous ne

l'avons jamais vu manquer dans les premiers tubes, du