FIN DU TOME PREMIER
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Fig. I. — Coupe transversale d'un grain de Blé rose profondément
altéré et traité par l'iode 8
Fig. 2. — Partie de la coupe transversale d'un grain moins profondément corrodé et plus grossi que dans la fig. i g
Fig. 3. — Résorption de l'amidon dans la masse du gluten sous l'action du Micrococcus lo
Fig. 4. — Micrococcus Tritici. 10
Fig. 5. — Corrosion progressive de l'amidon et gélification des parois cellulaires au voisinage de la cavité où sont des amas de Micrococcus 10
Fig. 6. — Jeunes Tomates atteintes par la maladie bactérienne 20
Fig. 7. — Coupe transversale d'une tunique charnue d'un bulbe de
Jacinthe attaqué par le Bacterium gummis 23
Fig. 8. — Tige de Vigne atteinte de Gommose bacillaire coupée transversalement 26
Fig. 9. — Coupe très grossie de bois de Vigne, montrant des vaisseaux et des cellules remplies de matière gommeuse 27
Fig. 10. — Rameau d'Olivier portant des tumeurs bacillaires 29
Fig. II. — Jeune tumeur bacillaire de l'Olivier coupée longitudina-
lement 3o
Fig. 12. — Bacillus Oleae 3 1
Fig. i3. — Tissu de la tumeur corrodé par les Bacilles sur le bord
4'une lacune 32
Fig. 14. — Branche de Pin d'Alep couverte de tumeurs bacillaires.. 34
Fig. i5. — Grosse tumeur coupée par la moitié 34
Fig. 16. — Bacillus Pini 34
Fig. 17. — Lacunes d'une tumeur contenant des amas de Bacilles réunis en zooglées 35
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Fig. i8. — Pied de Chou portant sur ses racines et le bas de sa tige
des tumeurs produites par le Plasmodiophora Brassicae 41
Figf 19. — Cellules d'une tumeur contenant le piasmodium parasite 43
Fig. 20. — Spores de Plasmodiophora se formant dans les cellules
d'une tumeur 43
Fig. 21. — Spores germant à divers degrés de développement 44
Fig. 22. — Sporanges d*Olpidium Brassicae 5 1
Fig. 23. — Zoospores d'Olpidium Brassicae 5 1
Fig. 24. — Sporanges quiescents d'Olpidium Brassicae 52
Fig. 25. — Pythium de Baryanum, Mycélium et conidies 55
Fig. 26. — Pythium de Baryanum. Sporange et zoospores 57
Fig. 27. — Pythium de Baryanum. Oogone, anthéridie, oosphère et
œuf 59
Fig. 28. — Grappe de fieurs de Chou envahie et déformée par le Cys-
topus candidus 63
Fig. 29. — Cystopus candidus filaments conidiophores. Conidies et
zoospores 65
Fig. 3o. — Cystopus candidus. Œuf et zoospores 67
Fig. 3 1 . — Cystopus cubicus. Conidiophores et conidies 69
Fig. 32. — Cystopus cubicus. Œuf 60
Fig. 33. — Phytophthora omnivora. Feuille de Hêtre portant à la surface des conidiophores et à son intérieur des œufs 73
Fig. 34. — Phytophthora omnivora. Zoospores germant à l'intérieur
d'une conidie et conidie produisant une conidie secondaire 74
Fig. 35. —î Phytophthora omnivora. Conidies et zoospores 75
Fig. 36. — Phytophthora omnivora. Mycélium, oogones et anthéri-
dies 76
Fig. 37. — Phytophthora omnivora. Œuf germant en produisant un
conidiophore 77
Fig. 38. — Phytophthora infestans. Mycélium et conidiophores 81
Fig. 39. — Phytophthora infestans. Conidies et zoospores 83
Fig. 40. — Phytophthora infestans. Mycélium d'un tubercule de
Pomme de terre produisant un conidiophore 85
Fig. 41. — Peronospora viticola. Mycélium portant des suçoirs loi
Fig. 42. — Peronospora viticola. Touffe de conidiophores portant
des conidies 101
Fig. 43. — Peronospora viticola. Grosses conidies piriformes io3
Fig. 44. — Peronospora viticola. Conidies et zoospores 104
Fig. 45. — Peronospora viticola. Œufs isolés contenus dans leur
oogone io5
Fig. 46. — Coupe transversale de feuille de Vigne remplie d'œufs de
Peronospora viticola 106
Fig. 47. — Peronospora viticola. Œufs germant 109
Fig. 48. — Peronospora viticola. Mycélium du parasite dans la chair
d'un grain de raisin atteint du Rot brun 1 1 3
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Fig. 49. — Peronospora vilicola. Mycélium coralloïde contenu à Tin-
térieur d'un grain et y produisant des conidiophores 114
FIg. 5o. — Peronospora nivea. Conidiophore, conidies et zoospore ,
germant i33
Fig. 5i. — Peronospora gangliformis. Mycélium, conidiophores et
conidies germant i35
Fig. 52. — Peronospora Schachtii, Conidiophores, conidies, œufs et
fragment de mycélium portant un suçoir 140
Fig. 53. — Peronospora effusa, Conidiophores, œufs, conidie germant 143
Fig. 54. — Peronospora Schleideni. Conidiophore, conidies et œuf. . 144
Fig. 55. — Peronospora Trifoliorum. Conidiophores et conidies 145
Fig. 56. — Peronospora Viciae sur pois conidiophore et conidies... 147 Fig. 57. — Pero«o^/)orrt rtr^or^5ce«s sur Pavot-œillette, conidiophore,
conidies et œufs 148
Fig. 58. — Mycélium de VUstilago Maydis 1 52
Fig. 59. — Formation des spores de VUstilago Maydis 1 55
Fig. 60. — File de spores d'Ustilago olivacea 157
Fig. 61. — Spores à'Entyloma Calendulae i57
Fig» 62. — Ustilago Avenae. Spores germant dans Teau et dans un liquide nutritif 159
Fig. 63. — Épi de Blé charbonné 166
Fig. 64. — Épillets charbonnés d'Avoine 167
Fig. 65. — Épillets charbonnés d'Orge 167
Fig. 66. — Ustilago Panici-miliacei sur Millet. — Inflorescence désorganisée par le parasite et germinations de spores dans l'eau et
dans un milieu nutritif 169
Fig. 67. — Ustilago Maydis. Tumeur charbonneuse du Mais, germination de spores et de sporidies 171
Fig. 68. — Ustilago Sorghi, Ovaire de Sorgho hypertrophié et rempli
de charbon, germination des spores. 177
Fig. 69. — Tilletia caries. Épi de Blé carié, grains cariés, germination de spores et de sporidies de Tilletia 181
Fig. 70 — Tilletia caries. Mycélium développé dans un milieu nutritif et portant des conidies. — Formation des spores de Carie — 182
Fig. 71. — Urocystis occulta. Glomérules de spores germant 189
Fig. 72. — Oignon aitaqué par le charbon et spore d' Urocystis Ce-
pulœ 192
Fig. 73. — Betterave chargée de tumeurs produites par VŒdomyces
leproides '9^
Fig. 74. — Tumeur produite par VŒdomyces leproides^ aspect extérieur 196
Fig. 75. — Coupe d'une tumeur produite par VŒdomyces leproides. 196 Fig. 76. — Œdomyces leproides, coupe du tissu d'une tumeur passant par une logette où se produisent les spores 197
Fig. 77. — Spores d'Œdomyces leproides i97
Pages.
Fig. 78." — Uredo linearis. — Urédospores. — Urédospore germant. . 201
Fig- 79- — Puccinia graminis. Téleutospore et sporidies germant.. . 212
Fig. 80. — Mcidium Berberidis 216
Fig. 81. — Germination d'une spore à'Mcidium Berberidis 217
Fig. 82. — iEcidiole (spermogonie) d'Mcidium Berberidis et sperma-
ties germant 218
Fig. 83. — Tache d'Uredo linearis (Rouille orangée) 225
Fig. 84. — Touffe d'urédospores d'Uredo linearis 226
Fig. 85. — Touffe de téleutospores de Puccinia graminis 226
Fig. 86. — Tache de Puccinia graminis (Rouille noire) 227
Fig. 87. — Tache d'Uredo Rubigo-vera 229
Fig. 88. — Uredo Rubigo-vera. Urédospores 229
Fig. 89. — Puccinia Rubigo-vera. Téleutospores 23o
Fig. 90. — Tache de Puccinia Rubigo-vera 23 1
Fig. 91. — Puccinia coronata, forme Uredo et forme Puccinia; téleutospore germant 23 5
Fig. 92. — Uromyces Fabae. urédospores et téleutospores 24.6
Fig. o3. — Uromyces Phaseoli, urédospores et téleutospores 348
Fig. 94. — Uromyces Trifolii, téleutospores 249
Fig. 95. — Uromyces Pisi, téleutospores 249
Fig. 96. — Phragmidium Rubi-Idœi. ^Ecidium et téleutospore 252
Fig. 97. — Feuille de Poirier attaquée par la Rouille grillagée 255
Fig. 98. — Rœstelia cancellata, forme iEcidium du Gymnosporan-
gium Sabinae 236
Fig. 99. — Gymnosporangium Sabinae, Masses gélatineuses couvertes
de téleutospores 259
Fig. 100. — Téleutospores de Gymnosporangium Sabinae 260
Fig. 101. — Peridermium oblongisporium sur les aiguilles du Pin... 264
Fig. 102. — Spores de Peridermium oblongisporium 266
Fig. io3. — Coleosporium Senecionis. Germination 266
Fig. 104. — Peridermium Pini, Sur un rameau de Pin 269
Fig. io5. — Peridermium Pini. Conceptacles plus grossis 270
Fig. 106. — Spores de Peridermium Pini 270
Fig. 107. — JCronartium asclepiadeum, Urédospores et téleutospores 273
Fig. 108. — Balai de sorcière produit par le Peridermium elatinum. . 278 Fig. 109. — Feuilles de Pin envahies par le Peridermium elatinum et
feuilles de Pin normales 279
Fig. 110. — Chrysomyxa Rhododendri. Coupe d'une touffe de téleutospores 281
Fig. III. — Chrysomyxa Abietis. Feuilles attaquées et téleutospores
germant 284
Fig. 112. — Cœoma pinitorquum. Rameaux courbés par le Caoma et
coupe d'une branche où il fructifie 287
Fig. 1 13. — Melampsora betulina. Téleutospores germant 290
Fig. 1 14. — Melampsora Tremulae. Urédospores et téleutospores 291
TABLE DES FIGURES. ' 4i3
Pages.
Fig. 1 15. — Pousse de Sapin dont les feuilles sont couvertes de fructifications de Peridermium columnare et aecidies un peu grossies 294
Fig. 1 16. A. — Calyptospora Gœppertiana. Téleutospores à divers degrés de développement se formant dans les cellules de l'épi-
derme 295
Fig. 116. B. — Calyptospora Gœppertiana. Téleutospores germant.. . . 296 Fig. 117. — Exobasidium Vitis. Basides chargées de spores et spores
germant 3oo
Fig. 118. — Hypochnus Solani. Filament fertile dont les ramifications
se terminent en basides 3o2
Fig. 119. — Sclerotium semen. Sclérotes de grandeur naturelle et grossis 304
Fig. 120. — Typhula variabilis. Pousses de Typhula émises par des
sclérotes 3o5
Fig. 121. — Tronçon de branche couvert de réceptacles de Stereum
frnstulosum 309
Fig. 122. -^ Slereumfrustulosum. Réceptacles de grandeur naturelle. 3 10
Fig. 123. — Stereum frustulosum. Couche hyméniale 3 10
Fig. 124. — Stereum frustulosum. Coupe de réceptacle montrant les
couches annuelles 3ii
Fig. 125. — Coupe transversale de bois corrodé par le Stereum frustulosum 3 1 1
Fig. 126. — Coupe longitudinale de bois corrodé par le Stereum frustulosum •. 3 1 2
Fig. 127. — Tissu du bois corrodé par le Stereum frustulosum 3i3
Fig. 128. — Fibres du bois corrodé par le Stereum frustulosum 3i3
Fig. 129. — Écorce couverte de réceptacles de Stereum hirsutum 3i5
Fig. i3o. — Bois altéré par le Stereum hirsutum de grandeur naturelle 3 1 6
Fig. i3i. — Partie encore peu altérée du bois attaqué par le Stereum
hirsutum 3 17
Fig. i32. — Bois très profondément corrodé par le Stereum hirsutum. 3ij Fig. i33. — Hydnum diversidens. Coupe d'un chapeau portant des
dents fertiles à sa partie inférieure 32o
Fig. 134. — Hydnum diversidens. Coupe transversale de dents montrant des couches d'accroissement 35 1
Fig. i35. — Hydnum Schiedermayri. Réceptacle vu de face 322
Fig. i36. — Coupe d'un réceptacle d'Hydnum Schiedermayri 322
Fig. 137. — Réceptacles résupinés de Polyporus annosus 327
Fig. i38. — Polyporus annosus. Coupe de l'hyménium 327
Fig. 139. — Polyporus annosus. Conidiophores chargés de conidies. . . 33o
Fig. 140. — Polyporus Pini 333
Fig. 141. — Bois de Pin altéré par le Polyporus Pini 335
Fig. 142. — Réceptacle de Polyporus Hartigii 337
Fig. 143. — Mycélium du Polyporus Hartigii dans les parties brunes
du bois attaqué 338
Para.
Fig. 144. — Bois très profondément altéré par le mycélium du Poly-
porus Hartigii 338
Fig. 145. ~ Réceptacle du Polyporus borealis 340
Fig. 146. — Polyporus borealis. Coupe du réceptacle 341
Fig. 147. — Bois envahi par le mycélium du Polyporus vaporarius. . 342
Fig. 148. — Hyphes du Polyporus vaporarius 344
Fig. 149. — Altération du bois sous l'action des hyphes du Polyporus
vaporarius 344
Fig. i5o. — Bois envahi par le mycélium du Polyporus Schweinit\ii . 346
Fig. i5 1. — Polyporus Schweinit\iû Hyphes encroûtées de résine 347
Fig. i52. — Trachéides du bois profondément corrodées par le Polyporus Schweinit\ii 347
Fig. i33. — Polyporus sulphureus. Deux réceptacles, l'un épais, l'autre
plat et étalé 35o
Fig. 154. — Polyporus sulphureus. Basides 35 1
Fig. 1 55. — Polyporus sulphureus. Conidiophorcs et conidies 3 5 1
Fig. 1 56. — Réceptacle du Polyporus hispidus 353
Fig. 157. —Polyporus hispidus. Poils agglutinés formant la surface
pelucheuse du réceptacle 354
Fig. 1 58. — Polyporus hispidus. Baside et spores 354
Fig. 1 59. — Bois de Pommier altéré par le Polyporus hispidus 355
Fig. 160. — Po/x';7orusA»;7/^u5. Altération du bois dans la partie brune. 356 Fig. 161. — Polyporus hispidus. Altération du bois dans la partie blanche et spongieuse 357
Fig. 162. — Polyporus igniarius 36i
Fig. i63. — Polyporus fulvus 363
Fig. 1 64. — Polyporus fomentarius 366
Fig. i65. — Polyporus betulinus 368
Fig. 166. — Merulius lacrymans. Mycélium et réceptacle 372
Fig. 167. — Hyphes de Merulius lacrymans 373
Fig. 168. — Armillaria mellea. Rhizomorphe de grandeur naturelle. 378 Fig. 169. — Armillaria mellea. Coupe transversale d'un rhizomorphe. 379 Fig. 170. — Armillaria mellea. Coupe longitudinale de la partie extérieure du rhizomorphe 38o
Fig. 171. — Armillaria mellea. Coupe transversale de la partie extérieure d'un rhizomorphe 38 1
Fig. 172. — Armillaria mellea. Rhizomorphe s'épanouissant en lame
sous l'écorce 382
Fig. 173. — Armillaria mellea. Coupe de rhizomorphe étalé en lame
sous l'écorce 383
Fig. 174. — Armillaria mellea. Réceptacles •. 385
Fig. 175. — Armillaria mellea. Réceptacle très jeune 386
Fig. 176. — Armillaria mellea. Partie de la figure précédente plus grossie 386
Fig. 177. — Armillaria mellea. État plus avancé du développement de
la partie représentée fig. 176 386
Fig. 178. — Jeune pousse de Pêcher «teinte de la Cloque produite
^tVExoaSctii deformans 39S
Fig. 179. — Exoascui defOriaavs.fMlala ferlîlcsse produisant entre
l'ipiderme et la cuticule 396
Fig. iSo. — Mycélium de ïBxoascia dtfitrttiaas 397
Fig. 181. —EïOfl«Mdçrt)rBiaiiî. Cellules fertiles ïues de dessusâlra-
Yen la cuticule 398
Fig. 181. — Eioaîcas rfe/brmimj.Aaquei mûrs contenant lesspores... 398
Fig. [S3. — Exoascui déformant. Spores germent 3g9
Fig. 134. — Prunes IransforraJes en pochettes par ['Exoascas Pruni. 401 Fig. |85. —Exoaiois Pruni. Asquea à dïfférenis degrés d* déTcloppe-
Fig. 186. — Cuticule d'une pochette détachée et déchirée par le déTe-
loppement des aaquea de l'Exoascui Pruni 401
Fig. 187. — Exoascus Pruni, Aaqut mûr contenant lestporea 403
Fig. i88. — Exoaicus Pruni. Aiquesiidés et spores libres commençant
igerni"- 4o3
Fig. iSg. — Balai de sorcière formé par VExoascus Cerail 404
Fig. 190. — Feuilles de Poirier attaquées par le Taphrina butlat-i 407
Paires.
Introduction i
