AMIBES

leur coloration bleu foncé sur les lissus nécrosés et les débris. Il ne faut pas se fier uniquement à la présence d'un protoplasma vacuolaire, car cette apparence peut résulter d'une altération cadavérique. Le noyau doit présenter deux zones caractéristiques, l'extérieure irrégulière, bleu violacé, l'intérieure rouge clair.

Mouton 1 a obtenu les résultats suivants par coloration vitale : le rouge de ruthénium (p. 723) colore vivement le karyosome en rouge et le protoplasme en rose pâle; le bleu de méthylène colore bien le caryosome; de même pour le violet dahlia, mais celui-ci tue l'Amibe.

Fixation en masse et coupes. — On peut laisser tomber dans le fixateur des gouttes de mucus ou de pus, riches en Amibes. Ces gouttes ne doivent pas être trop grosses, pour que le fixateur pénètre facilement. On inclut dans la paraffine, on coupe et on colore comme précédemment -.

Le formol à 5 p. 100 conserve admirablement les Amibes et leurs kystes avec l'aspect qu'ils présentent à l'état frais. Ce procédé est particulièrement indiqué pour le matériel destiné à l'enseignement : on dilue les matières ou le mucus avec leur volume de solution formolée, puis on décante l'excès de liquide. Les préparations, montées telles quelles entre lame et lamelle, se conservent bien lorsqu'elles sont lutées au lut de Krônig (p. 447).

Enfin, lorsqu'on a de grandes quantités d'Amibes, on peut les fixer et les colorer par centrifugation (p. 312 et o39).

IIL — EXPÉRIMENTATION

L'étude des lésions se fait d'après les mêmes méthodes. Les fragments de rectum sont prélevés au niveau des ulcérations, piqués sur des lames de liège paraffiné (p. 292) et fixés suivant les méthodes habituelles. Le Duboscq-Brasil et le Bouin réussissent très bien : on colore ensuite à l'héinaléine-éosine. Si on veut colorer au Giemsa (méthode des coupes, p. il4), on fixera de préférence au sublimé.

On peut encore employer (de même que pour les frottis) la méthode de Mallory et Wright :