T EG UNIQUE A I» P L T Q U K E

Cette dernière solution se prépare ainsi : On fait une solution concentrée d hémaloxyline dans 1 alcool absolu. Oela donne un liquide brun acajou foncé. D'autre part on prépare d'avance une solution saturée à froid de chlorure de calcium et d’alun dans l’alcool à 70°. Lorsqu'on veut préparer le liquide colorant, on filtre quelques centimètres cubes de cette dernière solution auxquels on ajoute six ou huit fois leur volume d alcool

Fig. 101.

Blastoderme de seiche en segmentation.

\ 70° C'est ce liquide qui va former le fond du bain colorant, qu’on achève de préparer en y ajoutant quelques gouttes de la solution alcoolique d’hématoxyline, de manière a avoir une belle teinte bleu-violet peu foncé. Si la teinte était rouge, il faudrait rejeter ce bain et en préparer un autre. Les blastodermes sont plongés dans celle couleur pendant quelques heures, puis portés dans de l'alcool à 10» légèrement acidulé à l'acide chlorhydrique (0,5 p. 100) qui lixe plus particulièrement la couleur sur les éléments nucléaires. Ile» qui deviennent rouges il faut se hâter de les retirer de ce liquide pour les laver longuement à l’alcool à 70» pur. Il importe de

SYS T È M E Y A S C U L A I \\ E

bien surveiller ce temps de la coloration pour ne pas trop décolorer, puis de bien laver à l'alcool à 70° renouvelé pour enlever toute trace d'acide, sans cpioi les préparations se décoloreraient à la longue. On déshydrate ensuite complètement, on éclaircit à l’essence de girofle et on monte dans la résine dammar. Ce mode de coloration est extrêmement précieux; en effet, le bain colorant étant alcoolique, les pièces une fois fixées n'ont pas à subir une hydratation et une déshydratation successives, qui peuvent les altérer plus ou moins. Los figures de division sont très nettes; les sphères attractives sont fol lement colorées en bleu, il est très facile de suivre leur dédoublement et leur marche autour du jeune noyau, puis de les voir devenir les pôles d'un nouveau fuseau, comme je l'ai décrit l'un des premiers en 1888.

J’ai fait représenter ici le bord d’un blastoderme vers la fin de la segmentation pour montrer la richesse et la diversité des stades de karyokinèse. Dans ce cas la seementation est trop avancée pour présenter la régularité dans sa marche quelle offre à ses débuts, mais le nombre et la diversité des' figures karyokinétiques répandues sur un faible espace rend les préparations très instructives.