EXPLICATION DES PLANCHES
Abréviations : c , épiderme; — c, coiffe; — a. pii., assise pilifère ; — p, poils ; v , voile ; — an0 2, assise épidermoïdale (la deuxième du tégument) ; — par., parenchyme; — end., endoderme; — a. pér ., assise périphérique du cylindre central ; — sel., éléments scléreux; — pros., prosenchyme ; — l., liège ; — périd., périderme; — subde, subéroïde ; — lib., liber; — vais, lign., vaisseaux ligneux.
Les figures 1-7 m’ont été communiquées parM. Ch. Flahault.
Fig. 1. Mirabilis jalap a. Coupe longitudinale de la radicule embryonnaire.
Fig. 2. Mirabilis jalapa. Tigelle et radicule dans l’embryon.
Fig. 3. Canna indica. Radicule au début de la germination.
Fig. 4. Canna indica. Coupe de la radicule dans la graine mûre.
Fig. 5. Bougainvillea spectabilis. Coupe longitudinale de la radicule embryonnaire.
Fig. 6. Oxybaphus viscosus. Coupe longitudinale de la radicule et de la tigelle embryonnaires.
Fig. 7. Mirabilis longiflora. Coupe longitudinale de la radicule et de la tigelle embryonnaires.
Fig. 8. Pontederiacrassipes. Coiffe et racine.
Fig. 9 Philodendron Houlletianum. Coupe transversale de la racine un peu au-dessous de la base du cône formé par la coiffe.
Fig. 10. Phænix Daclilifera. Coupe axiale de l’extrémité de la racine. (Je dois cette figure à M. Flahault).
Fig. 11. Pandanus Heterophyllus . Coiffe dont les assises externes subérifiées s’exfolient.
Fig. 12. Epidendron crassifolium. Coupe transversale de la racine loin du sommet.
Fig. 13. Scindapsus pertusas. Coupe transversale d’une racine grêle loin du sommet.
Fig. 14. Imantophyllum miniatum. Schéma de la coupe longitudinale de l’extrémité de la racine. *
Fig. 15. Imantophyllum miniatum. Coupe transversale d’une racine loin du sommet.
Fig. 16. Imantophyllum miniatum. Schéma de la coupe transversale à travers la coiffe près du sommet.
Fig. 17. Agave glauca. Coupe transversale de la racine loin du sommet.
Fig. 18. Vanilla aromatica. Coupe transversale de la racine très loin du sommet, au niveau où l’assise pilifère commence à s’exfolier. Les cellule s épidermidoïdales sont fortement épaissies en fer à cheval et subériliées.
Fig. 19. Calla palustris. Coupe transversale de la racine loin du sommet.
Fig. 20. Vanilla aromatica. Coupe transversale de la racine à un niveau supérieur à celui où l’assise pilifère s’exfolie. Toutes les parois des cellules épidermoïdales sont alors épaissaies.
Fig. 21. Anthurium nitidum. Coupe transversale de la zone interne de la racine loin du sommet.
Fig. 22. Scindapsus pertusus. Coupe transversale d’une grosse racine loin du sommet, au niveau où apparaissent les premières cellules scléreuses de la zone interne du parenchyme cortical.
Fig. 23. Pontederia crassipes. Coupe transversale de la racine loin du sommet.
Fig. 24. Agave glauca. Coupe transversale de la racine loin du sommet, montrant un épais anneau de cellules scléreuses autour de l’endoderme.
Fig. 25. Typha latifolia. Coupe transversale de la racine loin du sommet. L’endoderme se compose de cellules épaissies en fer à cheval et subériliées. La zone interne du parenchyme cortical offre les caractères normaux; la zone moyenne de grandes lacunes rayonnantes. La subéroïde forme à la périphérie, au-dessous de l’assise pilifère, un manchon continu d’une grande épaisseur.
Fig. 26. Raphidophora pinnata. Çoupe transversale de la zone interne du parenchyme cortical d’une grosse racine loin du sommet.
Fig. 27. Smilax excelsa. Çoupe transversale des cellules endodermiques de la racine loin du sommet.
Fig. 28. Marsilea quadrifolia. Coupe transversale de l’endoderme et de l’assise périphérique de la racine.
Fig, 29. Caryota urens. Çoupe transversale de l’un des faisceaux fibreux du parenchyme cortical delà racine.
Fig. 30. Equisetum telmateya. Coupe transversale d’une partie âgée de la racine.
Fig. 31. Marsilea quadrifolia. Coupe transversale d’une partie âgée de la racine.
Fig. 32. Lilium superbum. Coupe transversale de la racine loin du sommet.
Fig. 33. Equisetum telmateya. Coupe transversale delà racine.
Fig. 34. Smilax excelsa. Çoupe transversale de la racine près du sommet, avant l’apparition des premiers vaisseaux du cylindre central.
Fig. 35. Philodendron Houlletianum. Coupe transversale de l’assise périphérique du cylindre central et de l’endoderme de la racine.
Fig. 36. Smilax sarsaparilla . Coupe transversale de l’endoderme de la racine, très loin du sommet.
Fig. 37. Caryota urens. Coupe transversale de l’assise périphérique et de l’endoderme de la racine loin du sommet.
Fig. 38. Oporanthus luteus. Coupe transversale du cylindre central et de l’endoderme de la racine loin du sommet.
Fig. 39. Marsilea quadrifolia. Coupe transversale d’une partie jeune de la
racine.
Fig. 40. Iris squaleus. Coupe transversale de la périphérie de la racine.
Fig. 41. Iris germanica. Coupe transversale du cylindre central et de l’endoderme de la racine.
Fig. 42. Asphodelus europœus. Coupe transversale d’une radicelle.
Fig. 43. Iris germanica. Coupe transversale du liège de la racine.
Fig. 44. Monstera repens. Coupe transversale de l’assise pilifère, de l’assise épidermoïdale génératrice de liège dans la racine.
Fig. 45. Phalangium humile. Coupe transversale du cylindre central et de la zone interne du parenchyme cortical d’une partie âgée de la racine.
Fig. 46. Asphodelus europœus. Coupe transversale du liège centripète irrégulier du tubercule radical.
Fig. 47. Philodendron Houlletianum . Coupe transversale des cellules scléreuses et du liège de la racine.
Fig. 48. Philodendron Houlletianum. Autre aspect du liège dans la racine.
Fig. 49. Asphodelus europœus. Coupe transversale du liège centripète inter médiaire du tubercule de la racine.
PLANCnE 6.
Fig. 50. Imantophyllum miniaium. Coupe transversale du voile, de l’assise épidermoïdale et du liège d’une grosse racine dans sa partie aérienne.
Fig. 51. Scindapsus pertusus. Coupe transversale du liège et du périderme d’une grosse racine aérienne loin du sommet.
Fig. 52. Asparagus officinalis. Coupe transversale du subéroïde de la racine.
Fig. 53. Strelitzia augusta. Coupe transversale d’un renflement du subéroïde de la racine.
Fig. 54. Pandanus stenophyllus . Coupe transversale de l’appareil tégumen* taire de la racine.
Fig. 55. Dracœna Draco. Coupe transversale du subéroïde de la racine.
Fig. 56. Tanus Baccata. Coupe transversale de l’assise périphérique du cylindre central et de l’endoderme de la racine.
Fig. 57. Séquoia sempervirens. Çoupe transversale de l’endoderme et de la zone interne du parenchyme cortical de la racine.
Fig. 58. Pinus halepensis. Çoupe transversale du liège de la racine.
Fig. 59. Raphidophora pinnata. Çoupe transversale de l’assise pilifère et du liège de la racine.
Fig. 60. Fraxinus excelsior. Coupe transversale de la racine à la fin de l’organisation primaire.
Fig. 61. Fraxinus excelsior. Coupe transversale d’une jeune tige.
Fig. 62. Pélargonium zonale. Coupe transversale du liège de la tige.
Fig. 63. Villarsia nymphoides. Coupe transversale de la racine.
Fig. 64. Ligustrum ovalifolium. Coupe transversale de la racine.
Fig. 65. Ligustrum ovalifolium. Coupe transversale de la racine.
Fig. 66. Faba vulgaris. Coupe transversale delà zone externe du parenchyme cortical lors de l’organisation secondaire du cylindre central.
Fig. 67. Fraxinus excelsior. Coupe transversale de la racine pendant la période secondaire.
Fig. 68. Faba vulgaris. Coupe transversale de la zone interne de l’écorce et du parenchyme tégumentaire secondaire de la racine.
Fig. 69. Echinops exaltatus. Coupe transversale de la racine montrant les divisions radiales de l’endoderme et les canaux oléifères.
Fig. 70. Faba vulgaris . Coupe transversale du cylindre central et de l’endo derme de la racine à la fin de la période primaire.
Fig. 71. Faba vulgaris. Coupe transversale du cylindre central et de l’endoderme de la racine pendant la période secondaire.
Fig. 72. Ruyschia souroubea . Coupe transversale du liège cortical de la racine.
Fig. 73. Taracum leonidens. Coupe transversale de la racine.
Fig. 74. Opuntia glauca. Coupe transversale du liège et du périderme de la racine.
Fig. 75. Sambucus pubescens. Coupe transversale du cylindre central et de l’endoderme de la racine à la fin de la période primaire.
Fig. 76. Thalictrum lucidum. Coupe transversale de la racine.
Fig. 77. Ranunculus sceleratus. Coupe transversale de la racine loin du sommet.
Fig. 78. Potentilla anserina. Coupe transversale du liège de la racine,
Fig. 79. Arcliangelica officinalis. Coupe du liège de la racine.
EXPLICATION DES PHOTOGLYPTIES
(Coupes transversales.)
1° Cryptogames vasculaires.
Phot. 1. Aspidium violascens. Racine. Avant l’épaississement du parenchyme cortical.
Phot. 2. Lastrea filix-mas. Racine. Épaississement centrifuge de la zone interne du parenchyme cortical.
Phot. 3. Pteris àrgutd. Racine. Coupe transversale de la racine principale et coupe longitudinale d’une radicelle. Les parois des cellules de la zone interne du tégument sont épaissies.
Phot. 4. Marsilea quadrifolia. Racine. Les parois des cellules du parenchyme cortical commencent à s’épaissir. La zone externe de ce parenchyme est réduite aune assise; la zone interne est formée de plusieurs assises de cellules, disposées en liles radiales et laissant entre elles des méats quadrangulaires.
Phot. 5. Selaginella arborea. Racine. Les cellules de la zone externe du tégument sont collenchymateuses; elles sont ici plus petites et plus épaissies que celles de la zone interne.
2° Monocotylédones.
Phot. 6. Æchmea Ludmanni. Racine. Épaississement des parois cellulaires de la zone interne du parenchyme cortical..
Phot. 7. Philodendron Houlletianum (jeune). Racine. Zone interne du parenchyme cortical et région externe du cylindre central. Dans le parenchyme cortical, canaux oléifères entourés chacun d’un manchon de fibres; ici ces fibres sont encore peu épaisses, et les parois des cellules qui les entourent sont minces. Méats quadrangulaires entre les cellules de la zone interne.
Phot. 8. Philodendron Houlletianum (partie âgée). Racine. Même région que la précédente. Épaississement des éléments cellulaires du tégument à partir de l’endoderme ; épaississement des fibres qui entourent les canaux oléifères. Dans le cylindre central, épaississement et fibrification des éléments du tissu conjonctif.
Phot. 9. Philodendron Houlletianum (jeune). Racine. Zone externe et portion de la zone^interne du tégument.
Phot. 10. Philodendron Houlletianum (partie âgée). Racine. Même région que la précédente. A la périphérie, cellules subéreuses à parois minces recouvertes de cellules scléreuses, absolument opaques, représentées par une bande noire sur la photoglyptie.
Phot. 11. Scindapsus pertusus. Racine. Dans le tégument, sclérification d’une zone de cellules peu éloignées de l’endoderme ; dans le cylindre central fibrification des éléments conjonctifs. Ces deux phénomènes sont concomitants.
Phot. 12. Raphidophora pinnata . Racine. Anneau de cellules scléreuses ca-
naliculées, séparé de l’endoderme par quelques assises de cellules à parois minces, présentant les caractères normaux.
Phot. 13. Smilax rotundi folia. Tige.
Phot. 14. Asphodelus europæus. Racine tuberculeuse. Endoderme ; région interne du tégument; région externe du cylindre central. Dans ces deux régions grand développement des éléments cellulaires destinés à emmagasiner les réserves nutritives.
Phot. 15 et 16. Vanilla aromatica. Racine. En regard des faisceaux libériens les parois internes et radiales de l’endoderme et de l’assise rhizogène sont épaissies et subérifiées. Les éléments de l’assise épidermoïdale sont très développés, fortement épaissis et subérifiés.
Phot. 17. Anthurium nitidum. Racine. Épaississement et subérification de l’endoderme et de l’assise rhizogène en regard des faisceaux libériens.
Phot. 18. Asphodelus europæus. Racine. Liège périphérique issu de l’assise sous-jacente à la membrane épidermoïdale.
Phot. 19. Raphidophoraprimata. Racine. Liège périphérique à parois radiales légèrement plissées. Les parois transversales présentent de faibles épaississements ondulés qui rappellent ceux des cellules du voile des Épidendrées, Vandées, Anthurium, Imantophyllum, etc. . . Ces épaississements, ordinairement invisibles dans le microscope, ont été décelés par la photographie. Les cellules du parenchyme cortical contiennent de l’amidon et des aiguilles d’oxalate de chaux.
Phot. 20. Tornelia fragrans. Racine. Liège périphérique. Poils internes dans les méats des cellules parenchymateuses.
Phot. 21 . Asparagus officinalis. Racine. Subéroïde.
Phot. 22. Pandanus stenophyllus . Racine. Ensemble du système tégumentaire. Subéroïde à la périphérie.
3° Dicotylédones.
Phot. 23 et 2i. Alchemilla vulgaris. Racine. Écorce primaire persistante.
Phot. 25. Echinops exaltatus. Racine. Id.
Phot. 26. Leontodon taraxacon. Racine. Id.
Phot. 27. Lappa major. Racine. Rareté des éléments vasculaires dans le cylindre central. On voit, un peu en deçà du centre de la photographie, deux petits faisceaux ligneux primaires opposés, centripètes et confluents. Dans le sens perpendiculaire se développent en direction centrifuge deux faisceaux ligneux secondaires, où les éléments cellulaires, susceptibles de recevoir les réserves nutritives de la plante, sont beaucoup plus nombreux que les vaisseaux.
Phot. 28. Silene gallica. Racine. Abondance des vaisseaux secondaires dans le cylindre central. Chute de l’écorce primaire. Tégument secondaire issu de l’assise péricambiale.
Phot. 29. Sedum telephium. Racine. Localisation de l’amidon dans le parenchyme cortical du tubercule.
Phot. 30. Delphinium consolida. Racine. Chute partielle de l’écorce primaire. L’assise dénudée se subérifie ou organise quelques cellules tubéreuses.
Phot. 31. Anémone perisylvanica.
Phot. 32 et 33. Ranunculus procerus. Racine. Persistance et grand développement de l’écorce primaire. Épaississement des cellules endodermiques.
Phot. 34. Ranunculus procerus. Tige. Faible épaisseur du tégument.
Phot. 35. Ficaria grandiflora. Racine (zone externe).,. \ Persistance
I de l’écorce primaire.
Phot. 36. Ficaria grandiflora. Racine (zone moyenne)... i Localisation
) de l’amidon .
Phot. 37. Nuphar luteum. Radicelle. Commencement des lacunes dans le parenchyme cortical primaire.
Phot. 38. Nuphar luteum . Racine âgée. Cylindre central et région interne du tégument primaire.
Phot. 39. Nuphar luteum . Racine. Lacunes de la zone parenchymateuse moyenne. Cette photographie a été faite sur la coupe même dont les phot. 38 et 39 représentent le cylindre central.
Phot. 40. Nuphar luteum. Racine. Lacunes de la zone parenchymateuse externe. Photographie faite sur la coupe même dont les phot. 38 et 39 représentent les autres régions.
Phot. 41. Villarsia nymphoides. Radicelles. Elles ne présentent pas encore de lacunes dans leur tissu parenchymateux.
Phot. 42. Veronica pallida». Racines. Persistance du tégument primaire.
Phot. 43 et 44. Polygonum amphibium. Racines. Id.
Phot. 45. Asarum euroyœum. Racine. Persistance du tégument primaire ; il acquiert un grand développement.
Phot. 46. Ruyschia soubroubea . Racine aérienne. Liège à la périphérie du parenchyme cortical primaire persistant.
Phot. 47. Arthante potifolia. Racine. Début de la formation subéreuse vers la périphérie du tégument primaire.
Phot. 48. Jasminum humile. Racine. Persistance du tégument primaire. Manchon de liège périphérique.
Phot. 49. Appareil miprophotographique monté sur son pied mobile.
Phot. 50. Appareil microphotographique.
La photographie aux sels d’argent s’altérant après quelques années d’exposition à la lumière, j’ai eu recours à la photoglyptie pour obtenir Timage positive de mes clichés négatifs sur verre. Le tirage photoglyptique des planches 12 et 24 a été fait parla maison Goupil et C\ Le tirage des autres clichés a été fait dans les Ateliers de reproduction artistique, 15, quai Voltaire, à Paris.
PARIS, — IMPRlltiRII DS K. MARTlUlti RO» Httlt.OW, *.
Zûttùr ûiivirr </e/.
te^usriesiéaire' des Jlaezhes .
Pierre J'A-
Zniy> A. Sainte rv. Partir ,
d./2/t . sf&f' Snesic -, 7uz£. 6 f' J
Tû/suis n , 7Jl r . 2 .
Pouos Ü/misr d-el.
J^icrre sc
AppareiZ téi/ïtsnen/sure des Haa/ies
Jmp . A. Salmarv, Pans
Zouts (7/titt‘er t/e/
fi
terre se
yl/y/rtze/Z f?/// (// 2 e/?Z <7 /a e //é>tr j^/zz/zzez
Z/n/?. A. Sa/snon, farts.
An/i. des S cderu> . 7uz/ . //f Se/ie .
T O ZTL& 12 , IV . A ■
Z ouïs ûùvies' e/e/
rre. se .
As ei/'e/Z /df/?s/2?e/t/<7fZe //es Zi///v///\r
/"//>. Z.. S<f//non. ZJœ
A/m. t/e+r Se teste. sut/. 3 e Sé/'te
T 0/71& zz , jP£. 3 ..
Zûi/t’s û /trier </e/ .
^dp/ztz/'é’z / /es/' ss/st ezt / z/s vj a3e<r /uzesstej'
Pierre j<r
P/n/i . A. Sa/rint, Paris
- t't/i , , l\we/u>, /ni/. 0'e S />/'//>
Tom<’ 22, 7Y . //.
Z ouïs Ûù&iej* <2c2 .
P i/f're. je-
* If/iasW/ ùiyztmp/i/azre abs Jïapi>ie<r .
Zmp. A. SaZtnon , Par Z
An/i. (/(’<r Sc&e/u' . n/zS. ? Sème
Z’oznz* yy, /y. 7
ocS>00
IHtt.r
ioi/ij' û/ibier (/*>/.
AjVfjtz/'nz/ fAr///z/z yy? f/z/m s/fs /Isz/'z/i^s
J1 lierre* s
lmp. A. Sir/mon , ZJt
Tom e zz, PI , S .
4/i si . (fi<r Je/e/ie. /la/, fif Je /'fi.
Z.ouzs /7/ivier iZeZ .
A/z/zare/Z fiyzz/zf^si/ttfi& fie^r 7taexhe<r .
J* ierre^ •re.
7/n/j. A. Sa/a 10 n, .Pans
Phot. 1
4teAcc.s i/c /f<y> nx/ucfjons- 4rtiehques
f'hché. Coin'* ()hv
lô.Qutu \ olitur-e . / ‘«ci
ASPIDIUM VIOLASCENS
Phot 11
■Ateliers tJe /feprocfuclto/ts<s4rtis(i(jaes .
'PhotoÿUjpliA
('licfié,JCouis (Hiuier
1Ô, Quai VoUatre, /Jaj-ts.
LASTREA FILIX-MAS
Phot. m
. dteliers de ZfyaroducJions ..dr/ixhyurs .
'P/iotoylypUe (i/icftê, ioit/s (Mivier
JÔ.Ouai Voltaire., Par
PTERI S
