DES

Il faut alors placer les flacons pendant 5 jours à létuve à 30°, après les avoir individuellement recouverts de papier détain durant les deux premiers jours, pour éviter une trop grande évaporation du milieu de culture.

Au bout de ce temps d’incubation, il faut procéder à la récolte du mycélium et à sa pesée après dessiccation, cette méthode étant gravimétrique.

Aussitôt les flacons retirés de l’étuve, nous les avons soumis à la vapeur à 100°, pendant 5 minutes, pour suspendre la croissance; puis, à l’aide d’une tige rigide d’ensemenceur, nous avons prélevé le mycélium qui formait un voile orange, visqueux, à la surface du milieu de culture; récolte facile, le mycélium ne se fragmentant que très peu, ceci en relation probable avec l’état d’enchevêtrement des hyphes.

Puis, nous avons séché ce mycélium entre deux feuilles de papier filtre, et, nous avons formé, avec ces petites masses de consistance élastique, des boulettes, lesquelles, placées sur une plaque de porcelaine vernie, sont mises à l’étuve à 100°, pendant 2 heures.

Après ce temps, le produit de culture de chaque fiole est devenu un petit fragment jaune-brun que nous disposons dans un exsiccateur et devons peser rapidement avant qu’il ait pu s’hydrater.

Poids de mycélium.

1" série d'essais.

Témoin — 0,0063

Solution vitaminique-test:

Protéolysat à doser:

1 ce. de Protéolysat au 1/10:

1 cc. Protéolysat au 1/5:

1 cc. Protéolysat au 1/2:

2° série d'essais.

Témoin — 0,01055.

Solution vitaminique-test:

Protéolysat à doser:

1 ce. Protéolysat au 1/2:

1 ce. Protéolysat pur:

1,5 cc. Protéolysat pur:

Poids du mycélium.

0,2y: O4y! 067 08y 1y Concentrations | | en pyridoxine en y

Protéolysat au 1% pur

.. — mesures de la courbe étalon n° 1 . — mesures de la courbe n° 2 Lei = AprOLÉOlY Sat

Discussion des résultats. — Conclusion.

Le tableau précédent nous montre que les poids de mycélium obtenus suivent bien l'augmentation des doses de Pyridoxine de la gamme-étalon d’une part, et les taux de concentration du Protéolysat d'autre part.

Une seule erreur est à relever: elle concerne la fiole contenant 0,4 y de Pyridoxine dans la premiere série d'essais et celle renfermant 0,8 y dans la deuxième série.

La simple lecture des résultats, nous indique que la Pyridoxine n'est pas très abondante dans les échantillons de Protéolysat. La croissance a été légèrement plus élevée dans

RTE e Je

les, fioles renfermant 1 cc. de Protéolysat dilué au 1/5 et 1/10 que dans la fiole-témoin.

Nous pouvons constater aussi que nous avons mis en expérience des doses relativement trop faibles de Protéolysat, ce qui nous a donné peu de valeurs dans les limites de la gamme-étalon. Mais nous opérions avec du Protéolysat déjà dilué au 1/2 au départ, et ne pouvions, de toute facon, ajouter que 5 cc. de dilution au maximum.

Toutefois, la gamme étant bonne, dans l’ensemble, une seule valeur de léchantillon à doser devait, en principe, suffire à nous permettre de déterminer la teneur en Pyridoxine du Protéolysat.

Nous voyons que 1 cc. de Protéolysat dilué au 1/2 contient une quantité approximative de 0,2 y de Pyridoxine. Le calcul, d’après les chiffres de la deuxième série d’essais indique :

O2 OATS

— 0,215 y pour 1 cc. de Prot. dilué au 1/2 0,0109

d’où, pour 1 cc. de Protéolysat à 2%, la quantité de 0,430 y

de Pyridoxine.

D’après les chiffres de la deuxième série également, nous pouvons calculer que 1 cc. de Protéolysat pur à 2% renferme: