MATÉRIEL ET TECHNIQUE

OBSERVATIONS VITALES. — Le matériel, retiré du tube digestif des Vers non anesthésiés, étant isolé et trié sous le binoculaire à l’aide de pipettes fines, l’examen sur le vivant constitue la première et la plus précieuse des techniques mises en œuvre.

L'observation est réalisée à de faibles, puis à de forts grossissements, au microscope ordinaire ou au microscope à contraste de phase.

Peuvent être ainsi reconnus, dès l’abord, l’aspect morphologique précis, la présence de réserves lipidiques, la localisation du macro- et le plus souvent du micronoyau, le plan général de l’infraciliature, l’arrangement du réseau argyrophile (be Puyrorac, 1952) et celui des mitochondries, enfin, s’il y a lieu, la disposition du cytosquelette et la présence de Bactéries symbiotiques.

Les colorants vitaux apportent parfois des précisions supplémentaires. Nous avons pratiqué, suivant les techniques classiques, l'emploi du rouge neutre, du bleu de crésyl et du vert Janus, ces deux derniers s’étant révélés particulièrement intéressants, le premier pour l’étude du cytosquelette, le second pour celle des cinéties et de l’argyrome (DE Puyrorac, 1952).

Des microphotographies réalisées avec la chambre adaptable Zeiss-Winkel permettent de fixer ces observations fugitives.

L'observation vitale a été complétée, le plus souvent, par l’étude de préparation fixées et colorées.

FixaTions. — Ont été employés les fixateurs classiques de Bouin, HELLY, CHAMPY, FLEmMmIiNG, DA FANo, ainsi que l’acide osmique et l’alcool à 800. Exceptionnellement, pour certains examens au microscope électronique des cils, du squelette et du tégument, la fixation a été réalisée par dessiccation.

Les micro-inclusions ont été faites à la gélose-paraffine, selon la technique de CHar- TON (1923-1927).

Cozorarions. — Sur des coupes d’une épaisseur de 2 à 10 y, nous avons utilisé la fuchsine d’ALTMANN, le bleu de Una, le bleu de toluidine et l’hématoxyline de Recaup», cette dernière employée également comme le glychémalun de MAYER sur des animaux in toto, après étalement à la gélose suivant CHATTOoN (1925).

Ont été effectuées les doubles colorations : fuchsine-bleu de méthylène, Feulgenvert lumière, vert de méthyle-pyronine.

Terminozocie. — Les Oligochètes ont été déterminés surtout à l’aide du traité de MIicHAELSEN : «Oligochæta» (1900), et de la thèse de Mie TETRY : « Contribution à l’étude

96 PIERRE DE PUYTORAC

de la faune de l’Est de la France (Lorraine) » (1938) et les Polychètes, grâce à « La Faune de France » de Fauvez (1923). La liste des hôtes étudiés est donnée page 262, avec leurs lieux de récolte et les Astomes qu’ils hébergent.

La terminologie utilisée dans les descriptions est celle de CHaTron et Lworr, dont ces auteurs donnent un résumé dans leur travail sur les Apostomes (1935).

Rappelons seulement qu’ils désignent sous le vocable de cinétide l’ensemble constitué par le granule basal du cil ou cinétosome, imprégnable en noir par l’argent, le cil, la racine ciliaire ou cinétorhize, et le corpuscule ciliaire ou cénétoplaste, ce dernier étant une formation satellite du cinétosome, apparaissant excentriquement par rapport à lui, au moment où le cil pousse, et imprégnable en bistre par l’argent. L’ensemble du cinétoplaste et du cinétosome est dit cinétobase. Les cinétides sont unies entre elles par des desmoses tendues entre les cinétosomes pour former une cinétie, toutes les desmoses de la cinétie étant alors appelées un cinétodesme. Les cinéties d’un Cilié forment son cinétome.