‹ Nutrition carbonée des plantes à l'aide des acides organiques libres et combinésChapitre 6 sur 74 · CHAPITRE II · texte numérisé non relu

CHAPITRE II

Je viens d'exposer avec détails, dans le chapitre précédent, la technique suivie dans ces recherches ; je puis maintenant faire connaître les résultats qu'elle m'a donnés avec les acides Libres.

Trois substrata ont été utilisés dans tous mes essais : la pierre ponce, le sable de Fontainebleau et l’ouate hydrophile. Le premier, s’il offre de grands avantages pour la culture du Radis, a, par contre, l'inconvénient, qui de prime abord peut paraître très grave et même motiver son rejet, de produire une décomposition partielle des acides organiques en acide carbonique, dont le carbone est assimilé par les feuilles. Cet apport : indirect de carbone intervient done dans la détermination des

oids secs qui se trouvent faussés. Aussi importe-t-il, avan

tout, de s'assurer si les chiffres obtenus avec ce substratum et compris dansles tableaux L, IF, VTet VIE, qui suivent, ne sont pas entachés d'une erreur trop grande pour être acceptés tels qu'ils sont. Dans laffirmative, d'étudier la possibilité de les rectifier. Disons de suite que l'augmentation de rendement dù à ce fait est négligeable, eu égard à la grandeur des poids secs trouvés dans les milieux organiques, el aussi, point capital, à leur notable différence avec celui du pied témoin. Dans ces condilions, il m'est permis de considérer les résultats fournis par la ponce comme parfaitement utilisables. Autrement dit, l’assimilation de cette pelite quantité de carbone par la voie externe ne change pas le sens des phénomènes constatés dans le cas où celte assimilation n'intervient pas, comme cela est réalisé avec les autres substrata, le sable et l’ouate.

Il est possible, en effet, de déterminer d'une façon assez exacte l'erreur que je viens de signaler dans la fixation du poids sec de la plante. Et cela, en appliquant le raisonnement suivant : si l'on connaît la quantité de gaz carbonique produit par cette décomposition des acides durant la végétation de chaque pied et qu'on la transforme en cellulose où amidon qui peut en résulter, on obtiendra la part approchée qui revient à cetle source de carbone dans le rendement trouvé en poids sec. Je néglige la quantité de matières albuminoïdes et de cendres que ce carbone à pu, peut-être, provoquer : elle est infinitésimale. Néanmoins, si l’on veut pousser l'exactitude plus loin encore, je puis très bien tenir compte de cette augmenlation possible de cendres, en comparant l'apport étranger d'hydrate de carbone au poids seul de la matière orgänique sèche, qui peut être facilement déterminé en déduisant du poids sec total de chaque pied le poids de ses cendres.

Si l’on considère la composition de l'air confiné des tubes à culture », indiquée dans le tableau XXIL relatif aux expériences (1) faites pendant l'été de 1911 qui fut remarquablement chaud et qui produisit la plus forte altération des acides organiques, on remarque que les quantités d'oxygène dégagé, par

(1) Et pour lesquelles, ignorant encore l’action catalytique de la ponce, je se pas fait d'essais pour le contrôle direct de la décomposition partielle des acides.

exemple pour les concentrations égales au 1/1008 des poids moléculaires, sont assez variables. L'acide succinique n’en à dégagé que très peu. Or c’est l'acide qui à donné le plus grand rendement en poids sec, ce qui permet déjà de supposer que l'acide carbonique ainsi formé dans les autres milieux n'a pas dù beaucoup influencer le développement du Radis-Mais serrons la discussion de plus près. Cet oxygène constaté en excédent dans les tubes confinés provient évidemment de l'acide carbonique dégagé par la décomposition des acides, dont le carbone a été assimilé parl'intermédiaire dela fonction chlorophyllienne, puisque, une part, la composition de l'atmosphère des tubes témoins, Knop et Knop glucosé, n’a pas varié et que, d'autre part, dans des tubes semblables, mais sans plante, j'ai reconnu, les années suivantes, la présence d’acide carbonique. Comme le volume d'oxygène dégagé représente un même volume d'acide carbonique absorbé, la connaissance du premier donne celle du second.

En possession des données fournies par le tableau XXI, il est facile de déterminer le poids d'acide carbonique dégagé pendant toute la durée de chaque culture, le tube « à culture » ayantun volume (1) de 300 centimètres cubes, et de le transformer en amidon ou cellulose (2).

Voici les chiffres calculés; je mets également en regard l'augmentation de chaque pied en #alière organique sèche el pour les cultures en air libre et pour les cultures en air confiné.

Poids total Poids Augmentation constatée du pied d'acide correspondant en substance organique sèche carbonique de cellulose a dégagé. ou amidon. en air libre. en air confiné. Milligr. Milligr. Milligr. Milligr.

ACIdemmalique. "2" 5,4 Fe) 48 34,1 A ITIQUE ere 3 1,8 45,8 28,8 /succinique.. sv 1,2 0,7 47 43,4 CID QUE EE CCE 9 5,5 51 49,4 Knop (témoin). ......... » » 32,8 17

Ces résultats prouvent bien que l'accroissement en substance organique sèche, dû à l'assimilation du carbone de l'acide carbo-

(1) Je ne tiens pas compte du volume du substratum, qui pourtant est le tiers de celui du tube.

(2) Un centimètre cube d'acide carbonique pèse 2 milligrammes et 1 milligramme d'acide carbonique peut fournir 0 milligr. 61 d’amidon ou cellulose.

nique dégagé par la décomposition partielle des acides organiques, a imcontestablementuneimportance dans l'appréciation de l'action comparée des acides sur le Radis, considération secondaire. Mais, considération capitale, ce même accroissement, en . air confiné surtout, devient négligeable si l'on compare les poids secs obtenus en milieux acides avec celui du milieu témoin Knop.

On peut m'objecter que l'acide carbonique ainsi produit a pü, peut-être, en air libre, exciter l'assimilation chlorophyllienne el, en air confiné, accroître l’utilisation des acides. Mais ces objections disparaissent par le fait que les autres substrata, qui eux n'entrainent pas de décomposition chez la plupart de ces corps, donnent des résultats dont l'interprétation générale concorde exactement avec celle intéressant la ponce. Aussi cette discussion préliminaire a-{-elle surtout pour but de me permettre de Urer parti des chiffres trouvés avec les cultures de 1911, les seuls que j'ai obtenus au début de mon travail sans m être assuré directement, par des expériences de contrôle, de l'importance de la décomposition des acides. Car, pour ceux des années suivantes, le tableau XXIT indique nettement combien fubles, et partant négligéables, sont les dégagements d'acide carbonique dans les tubes sans plante, sauf pourtant pour ceux renfermant l'acide citrique.

$ 4. — INFLUENCE DES ACIDES ORGANIQUES SUR LE RENDEMENT ET LA TURGESCENCE

Les acides organiques, et leurs sels d'ailleurs, étant des agents très énergiques de plasmolyse et de turgescence, ainsi qu'ilrésulte des travaux de Wiesner, de De Vries. d’Aubert, il m'a paru intéressant de voir de quelle maniere ils se comportent dans mes expériences. C'est ce qui m'a engagé à calculer,

; ; ; PEÿ HAE pour toutes les récoltes, le rapport 7, dont j'ai déjà parlé et p qui permet d'apprécier la leneur en eau des tissus de la plante.

Le développement de mes cultures s'étant effectué en atmosphères Hbre et confinée, je vais d'abord m'occuper de ce qui concerne le premier milieu gazeux.

A. — CULTURES EN ATMOSPHÈRE LIBRE

J'exposerai,condensés dans des tableaux, les résultatsobtenus. 19 Sur substratum ponce.

20 Sur = sable.

30 Sur == ouate.

19 Cultures sur ponce. — Le tableau I mentionne les résullats des recherches poursuivies pendant l'été 1911. Les concenlrations des acides sont, dans une première série d'essais, le 1/100€ de leurs poids moléculaires et dans une seconde le 1/508, sauf pour l'acide citrique. Mais, je le répète, tous les milieux de la même série renferment la même quantité de carbone et possèdent une égale acidité. Ces conditions se trouveront désormais toujours réalisées. La durée de la végétlalion est de soixante jours.

ee TaBLEau [.

Rendement et turgescence de Radis cultivés, en 1911, dans les milieux « acides » et sur ponce.

POIDS MOYEN (en milligr.)

POIDS MOYEN = (en milligr.) MILIEUX

de

p- 1000 (en grammes).

(en grammes).

du pied du pied

culture. ER RS

des cendres du pied

des cendres du pied

frais. | sec.

Knop (témoin)....

Knop glucosé

Acide malique....

— tartrique...….

— succinique..| 41,18 |1052161,1 — citrique - ...| 4 1235164

L'acide tartrique à 3 p. 1 000 s’est montré toxique, iln'y a donc pas lieu de tenir compte des chiffres correspondants.

Le tableau IT relate les expériences des années 1912 et 1913 qui n'ont été faites qu'avec une seule concentration [le 1/100€ du poids moléculaire). La décomposition des acides a été ici beaucoup moins accentuée que durant l'été si chaud de 1911 : l'acide succinique, en particulier, s'est comporté comme un corps stable, pour ainsi dire.

TaBLEAU Il.

Rendement et turgescence de Radis cultivés en milieux « acides » el sur ponce.

MILIEUX

Durée : 50 jours.

en

Durée : 50 jours.

de

culture.

Knop (témoin) Knop glucosé....

Acide malique tartrique succinique citrique

Poids moyen du pied (en milligr.).

CONCENTRATION p. 1000 (en grammes)

Frais. Sec.

Poids moyen du pied (en milligr.).

20 Cultures sur sable. — Ces cultures ont pour but de contrôler les recherches précédentes ; le sable, en effet, ne provoque qu’une légère décomposition de l'acide citrique seul.

Tagceau I

Rendement et turgescence de Radis cultivés en milieux « acides » et sur sable.

MILIEUX de

culture.

Durée : 50 jours.

Re EN Poids moyen du pied (en milligr.). | P—»

TS, p

p- 1000 (en grammes].

Frais. | Sec.

Concentration |

Durée : 45 jours.

— Poids moyen du pied (en milligr.).

p. 1000 (en grammes).

Frais.

Concentration |

Knop (témoin) 689 Knop glucosé ,3: 936

Acide malique 795 — tartrique ss 5 | 190 — succinique 57 59 | 925 — citrique 688

Les concentrations utilisées en 1912 étaient égales au 1 /100€ des poids moléculaires des acides, mais, comme j'ai cru remar-quer une légère action toxique générale qui m'a été revélée, non pas par les poids secs mais par les phénomènes respiratoires dont Je parlerai plus loin, J'ai réduit, en 1913, les concentralions au 1/200€ les mêmes poids moléculaires. Néanmoins l'acide

di

tartrique à la dose de 0,75 p. 1 000 estencore nettement nocif: ilest vrai qu'il est mortel à 1#,50 p. 1 000. La matière du substratum intervient donc dans la nocivité de cet acide, qui, avec la ponce et pour 15,50 p. 1 000 a fourni une belle récolte. Nous retrouverons ce fait encore plus accentué avec l’ouate.

39 Cultures sur ouate. — Ces essais, poursuivis pendant l’année 1913, ont été un second moyen de contrôle. Les résultats obtenus constiluent le tableau IV.

L'ouate est un substratum qui maintient, mieux encore que le sable, la stabilité des acides: néanmoins, l'acide citrique s’est également un peu décomposé. Au point de vue de la toxicité de ces corps, on peut remarquer qu’elle est plusaccentuée qu'avec le sable. C'est ainsi que les acides malique et tartrique, pourtant employés à de petites doses, au 1/200€ du poids moléculaire, comme les autres d'ailleurs, sont mortels pour le Radis.

Je rappelle que les chiffres de ce Lableau représentent les poids des pieds dépourvus de leurs racines.

TaBLEAU IV.

Rendement et turgescence de Radis cultivés en milieux « acides » et sur ouate.

Durée : 50 jours.

OCT Re Poids moyen du pied (en milligr.).

MILIEUX

de Concentration

culture. p. 1000 ST

(en grammes). Frais Sec

Knop (témoin) KBOR ECS 5.7.0

Acide malique — {lartrique — succinique — citrique

Détermination de la stabilité des acides organiques au contact des substrata : sable et ouate. — Absorption des acides par la voie radiculaire. — Afin de me renseignerd'une manière directe sur la stabilité, en atmosphère libre, des acides organiques en présence du sable et de l’ouate, j'ai fait les essais suivants : j'ai placé, exactement dans les mêmes conditions que les autres,

des tubes témoins « de culture à blanc », c'est-à-dire des tubes renfermant des milieux identiques aux précédents, mais sans DNS Leur acidité, immédiatement après stérilisation, qui est d'ailleurs la même qu'avant cette opération, comme je l al constaté, a été dosée avec une solution décinormale de soude, en présence de la phtaléine; Je l'appellerai «aeidité initiale ». Au moment de la récolte du Radis, j'ai dosé à nouveau l'acidité, ainsi que celle des tubes avec plante, je la dénommerai «acidité finale ». Le rapprochement des acidités initiale et finale des tubes témoins, pour le même acide, me documentera sur sa stabilité pendant la durée de la végétation. De plus, sije procède à à la comparaison entre les acidités finales d’un tube Lémoin « à blanc » et d'un même tube avec plante, la différence, si elle est notable, me permettra d'affirmer l'absorption des acides.

Ce procédé, très simple et exact, n’a pu être employé avec la ponce qui, bien que soumise, mème à l’état pulvérulent, à de nombreuses lixiviations avec de l’eau chaude, ne cède que partiellement l'acide dont elle est imprégnée. J'ai constaté, en effet, une rétention de ces corps, dont la grandeur varie entre 10 et 30 p. 100. Cette « adsorption », tient à la constitution physique de la ponce et n’est pas, par conséquent, particulière à ces acides organiques. |

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