T G II N 1 Q U E >S P G T A L E

paralion d’une goulle d’eau pour la porter sous le microscope où on l’observe avec un grossissement do 300 diamètres. Les archégones, qui sont toujours peu nombreux, apparaissentau sommetdela lige comme depelites bouteilles à long col (fig. 1), XXXI). L’oospbère, o, se trouve dans la partie renflée ;

Fio. 20G. — a, Aiilhéridii^ (Irhiscoiito de Fi(7iaria h)/gromctrica ; />, r(‘11iil(‘ iiièi’(‘ roiifennaiit un aiithrrozoïdt^; c, autlidrozoïdo libre de Pulytricluim (Sachs).

Fig. 207. — Arcliégoiie jeune de Funaria /tjjf/rometrica montrant Foosphère h, les cellules du col h, l’extrémité du col m, encore fermé (Sachs).

le col, Cy est constitué par une seule assise de cellules. Celui-ci est clos dans sa jeunesse, il recouvre alors une file centrale d’éléments : les cellules du canal, qui, en se gélifiant et se gonflant sous finlluence de l’eau, écartent les cellules supérieures et préparent la voie aux anthérozoïdes (fig. 207).

Nous étudierons le sporogone chez les polytrics (fig. 6-9, XXXI). L’organe producteur des spores est en réalité un végétal parasite de la plante feuillée. Il provient de la division de l’œuf qui donne d’abord naissance à une production grêle et cylindrique. Celle-ci s’implante fortement par une de ses extrémités dans le rameau tandis que de l’autre elle appuie sur l’archégone qui, après s’être prêté pendant quelque temps à ce jeu, finit par se rompre, mais reste fixé au sommet de la végétation qu’il recouvre d’un véritable bonnet, la coiffe [co, fig. 6). L’embryon continue à s’allonger, tout en restant cylindrique, jusqu’à ce qu’il atteigne de 3 à 5 cenlim. de

TRAITÉ PRATIQUE DE MIGROUxR APHIE

longueur; sa partie supérieure devenant alors le siège d’un travail de prolifération très actif, il se renfle en ce lieu et se divise à la suite en deux parties distinctes (fig’. 6) : la soie, s, et la capsule, ca. Cette dernière présente aussi plusieui-s parties intéressantes, mais il faut, pour les voir toutes, enlever la coiffe qui voile partiellement la capsule (fig. 7). Celle-ci montre alors une nodosité inférieure, l’apophyse ap, séparée du corps de la capsule c, par un étranglement appelé col, et, supérieurement, une sorte de couvercle pointu, \ opercule op. Si la capsule est mure, on pourra amener sa déhiscence par une traction légère sur l’opercule (fig. 9). L’urne ouverte, inspectée à la loupe, laissera voir sur ses bords une couronne de petites dents, \Qpéristome. pe, et aussi, s’appuyant sur l’extrémité de ces dents, une fine membrane, placée là comme un obturateur, V épiphragine , ep. En pressant légèrement sur cette capsule, on en fera sortir une poussière jaune qui sera examinée au microscope à la façon du pollen : elle est constituée par les spores de la plante, petits organismes unicellulaires constitués comme toutes les spores des mousses par un corps protoplasmique nucléé (fig. 1,2 et 13, pl. XXXI), recouvert immédiatement par une enveloppe de cellulose, Vendospore, renforcée extérieurement par une membrane de cutine, Vexospore.

Pour connaître la constitution interne de la capsule, on se procurera des sporogones n’ayant pas encore atteint la maturité et, les encastrant dans la moelle de sureau, on en obtiendra des coupes longitudinales médianes que l’on montera dans l’eau (fig. 8, XXXI). Un grossissement de GO diamètres permettra de distinguer nettement : U la paroi de la capsule, pa; 2® la columelle, col, sorte de colonne médiane; 3° le sac circulaire sp, renfermant les spores ; 4°, les files de cellules o\\ trabécules t, qui relient ce sac à la paroi et à la columelle; 5° au point de jonction de l’opercule à la capsule, le groupe circulaire de cellules aplaties constituant Vanneau a, cause de la déhiscence ; 6°, au-dessus de celui-ci les groupes de cellules allongées et verticales qui formeront le péristome; enfin, 7°, au-dessus de celles-ci la couche de cellules transversales foncées, éléments de l’épiphragme, ep. On pourra rechercher ensuite avee un grossissement plus considérable les stomates à la surface de la capsule, seule partie des mousses où l’on rencontre ces organes.

Nous nous arrêterons encore sur le pcristome en raison de l’importance de cet appareil de dissémination des spores pour la classification des mousses. Le péristome des polylrics est spécial à ces plantes car, partout ailleurs, il est formé, non par des groupes de cellules, mais par des débris de cellules, qu’il soit simple ou double et quel que soit le nombre de ses parties. La coupe longitudinale médiane de la capsule du Bartramia poniiforniis (fig. 13, XXXI) imparfaitement mure nous montrera le mécanisme de la formation des dents du péristome dans la majorité des mousses. On remar-

qiiera (jiic ce végétal ne possède point d'apophyse, puis que le sac producteur est fixé à la columelle, enfin que les cellules de fanneau, a, sont surmontées par des rangées de cellules, pe, qui se distinguent nettement des cellules voisines par l’épaississement considérable de leur paroi externe. En ne portant que sur des groupes distincts de cellu'es, cet épaississement produitau milieu des tissus des lamelles résistantes triangulaires qui devien dront, en s’individualisant lors de la chute de l’opercule, les dents dupéristome de la mousse.

On nomme cils les dents internes du péristome double (fig. 208); elles s(;

F O n t i II a Iis n n t i pyret ica .

Fio. 209. — Portion du péristome et de rannean du Bnjinn cæspititium (de Lanessan).

Fio. 210. - Coupe longitudinale d'nn sporogone jeune de Pliascum cuspidatum montrant la couche sporigène teintée de noir, appliquée contre la colnmelle c Rieuitz-Geslotf).

développent à la façon des dents externes sur la face interne des mêmes cellules qui ont déjà produit les dents proprement dites par leur face externe. On pourra suivre leur formation sur la coupe longitudinale de la capsule imparfaitement mûre du Funaria hygrometrica ou celle du Fontinalis antipyretica (fig. 208).

Le péristome étant développé, on en séparera au moyen des ciseaux quelques dents avec le tissu qui les supporte et on les montera à plat dans la glycérine. Le microscope montrera sur ces dents les vestiges des cellules

qui les ont formées et aussi, à leur base, les cellules de l’anneau (lig. 11, XXXI et 209). On observera aussi le péristome entier à la loupe : H vu de coté (lig. 10, XXXI) et 2° vu de haut, ce qui permettra de constater non seulement l’absence ou la présence des cils et le nombre des dents, mais aussi l’influence de l’bumidité sur l’organe de dissémination. Pour rendre l’observation commode et intéressante, on séparera d’un coup de rasoir transversal toute la partie supérieure de la capsule et on assoira la partie détachée sur la platine de l’instrument, le péristome tourné vers l’observateur. Ayant l’œil sur l’oculaire, on insufflera de l’baleine sur la platine

Fio. 211. — Oermiiialion do spores do Funaria hugro^netrica; w, poil rhizoïdo.

et l’on verra les dents du péristome se recourber aussitôt vers l’intérieur de façon à obturer l’orifice; si Ton attend ensuite quelques minutes, les dents, se desséchant, se reporteront à l’extérieur.

Les spores se forment par un processus semblable à celui qui donne naissance aux grains de pollen aux dépens d’une couche de cellules placée à quelque distance du centre de l’organe (lig. 14, XXXI, et 210). On peut suivre facilement ce développement sur des coupes transversales ou longitudinales de jeunes capsules ; en agissant avec méthode, on parviendra sans peine à en observer tous les stades.

Les spores semées sur un sol humide (fig. 211) donnent naissance au protonema après un temps variable. Celui-ci comprend (fig. 17, XXXI) des rameaux souterrains, /5, colorés de brun, et des rameaux aériens verts, fa. On les montera dans l’eau pour les observer. On trouvera parfois à leur surface les bourgeons générateurs de la plante feuilllée. La plante se fixe au sol par des poils rhizoïdes qui rappellent le protonema et peuvent en certains cas donner aussi naissance à des bourgeons (fig. 211).

Les propagules ne sont pas communs chez les mousses ; on les étudiera chez X Aulocomnkm androgymnn où on les rencontre réunis en tête au sommet de certains rameaux (fig. 15, XXXI). On enlèvera avec l’aiguifle quelques-uns de ces corps et on les o])servera au microscope, montés dans l’eau ou la glycérine (fig. IG, XXXI). On pourrait encore s’adresser au

Fig. 212. — Poils rbizoïdos du Mnium hornum, w, desquels parteut des lilaineiits protonématiques n, générateurs des bourgeons k (Sachs).

Telraphis pellucida (fi g. 205). Les propagules sont dans Tun et l’autre cas (le petits corps parenchymateux constitués par un petit nombre de cellules.

Hépatiques. — Nous prendrons pour exemple le Marchantia polymorpha dont nous connaissons déjà le thalle. Le végétal est dioïque; il porte ses organes reproducteurs sur des rameaux perpendiculaires à sa surface (fig. 18 et 19, XXXI).

Les rameaux mâles (m, fig. 18, XXXI) rappellent un petit champignon ; ils sont verdâtres et portent les anlhéridies dans do petites ca\atés en forme de bouteilles s’ouvrant sur leur face supérieure (fig. 20 et 21, pl. XXXI). Les anthéridies du Marchantia ont la même constitution que les anthéridies des mousses : ce sont de petits sacs allongés [an, fig. 21), dont la paroi est formée par une seule assise de cellules, et qui sont fixés au fond du concep-

Fio. 213. — Vue d'ouseinble d’uiio coiipo loiig'itudliial(‘ duchapoaii luàlo d(' Marchantia pohjmorpha.t, piod ; hii, réceptacle ; X, anthéridies ; o, ouvertures des cryptes ; b, amphigastres; h poils rhizoïdes (Sachs).

Fie.. 21 1. — Tlialle femelle de Marchantia Fie.. 213. — Coupe du pohjmorpha portant des cupules à bul- réceptacle femelle billes et des réceptacles plus ou moins du Marchantia po- Agés (L. Marchand). ///morpAa montrant

des arcbégones, a.

protégés par le périchèze pc (Sachs).

tacle par un petit pédicule, pd. Lors de la maturité, les cellules supérieures du sac se gélifient pour permettre la sortie des anthérozoïdes. Pour voir ces choses, on séparera la partie étalée du réceptacle et, l’ayant couchée dans la pince de sureau, on en fera des coupes transversales ; on pourra constater en outre sur ces coupes que le tissu qui entoure les anthéridies a la même structure que le thalle (fig. 21, XXXI) et que la face inférieure du chapeau porte aussi des amphigastres [b, fig. 213) et des poils rhizoïdes h. Choisissant ensuite un chapeau bien développé, on versera une goutte d’eau sur sa face supérieure, puis on forcera les anthéridies mûres à éclater en serrant le réceptacle entre les doigts. Les anthérozoïdes se répandront dans le liquide, et celui-ci, ayant été porté sous le microscope et soumis à une amplification de 500 diamètres, montrera ces petits corps comme des orga-

nismes déliés terminés par deux cils, surtout si l’on a eu soin de les immobiliser et de les colorer par le réactif iodé-iodiiré.

Los rameaux femelles (lig. 19, XXXI et 214) ressemblent à de petites ombrelles réduites à leur armature. Les branches de l’ombrelle sont rapprochées du manche pendant la jeunesse de l’organe; elles s’en éloignent de plus en plus avec l’age et, à l’époque de la maturité des sporogones, elles forment un angle de 90° avec le pédicule. Aucun végétal ne permet de voir des archégones en aussi grand nombre et aussi facilement que le Marchautia. Ces organes sont fixés h la face inférieure et entre les branches de l’ombrelle; ils sont protégés par une sorte de voile qui les dépasse longuement : le périchèze {pc, fig. 215). Il faut les rechercher sur des conceptacles jeunes, à pédicules courts, dont les branches rabattues ont leur extrémité libre presque au contact du thalle, comme ceux qui se trouvent au premier plan de la figure 214. Les ombrelles plus âgées peuvent montrer aussi, au milieu des sporogones en voie de formation, des archégones ayant échappé à la fécondation, mais ceux-ci sont pour la plupart flétris et colorés de brun. En tous cas, on séparera l’ombrelle avec la partie supérieure du pédicule et on la couchera horizontalement dans la moelle de façon à en obtenir des coupes longitudinales ; on recueillera les coupes médianes passant par le pied et l’ombrelle et on les montera dans l’eau ou dans la glycérine acétique.

On trouvera toujours un certain nombre d’archégones conformés comme celui des mousses (fig. 22, XXXI), mais dont le col est tourné vers le bas (lig. 215, a). Ils sont insérés dans une sorte de calice très court, le périanthe [pp, fig. 22, XXXI) qui, en se développant de plus en plus à la suite de la fécondation, se comportera comme les téguments de Éovule et entourera finalement le sporogone entier [pp^ fig. 24 et 25, XXXI).

Le sporogone se développe dans l’intérieur de l’arcliégone, car la soie n’est représentée chez ce végétal que par un petit massif conique : le pédicelle (fig. 25, XXXI). Les sporogones mûrs sont assez volumineux pour tenir écartés les bords du périebèze et faire saillie au dehors (/, fig. 23, XXXI) ; ils laissent échapper par leur déhiscence des flocons jaunes, mélange de spores et d’élatères (fig. 27, XXXI) constitués par de longues cellules dont la paroi présente deux épaississements spiralés tournant en sens inverse. Ces élatères sont fortement hygrométriques, comme le prouve l’action de Élialeine sur elles, lorsqu’on les observe au microscope et avec un faible grossissement dans les conditions que nous avons données pour l’étude des spores des Equisetum. La structure des élatères réclame un grossissement de 300 diamètres pour être perçue. On peut suivre le développement des sporogones sur des ombrelles de plus en plus élevées, à rameaux de plus en pins divergents, et cela, soit au moyen de coupes longi-

'J' K C I \ N 1 n TT .s I > K c I A L 1^:

Uidiiialos médianes, soit encore, plus facilement, mais d’ime façon moins élégante, en détachant ces organes avec l’aiguille à cataracte après avoir écarté le périchèze et les montant dans l’eau ou la glycérine acétique.

Les propcujules ou buUnlles naissent au fond des petites coupes qui se produisent en grande quantité sur la face supérieure du thalle (fig. 18, XXXI, c). On les détachera sans peine avec l’aiguille et on les montera dans l’eau. Ce sont (hg. 32, XXXI) de petites lames parenchymateuses formées en grande partie par des cellules chlorophylliennes au milieu desquelles se trouvent çà et là des éléments grisâtres qui, à la germination, produiront les poils rhizoïdes. Sur les côtés se trouvent deux échancrures symétriquement placées au fond desquelles siègent les points végétatifs de la production; une troisième échancrure est bordée par des cellules brisées: elle correspond à l’attache du ])ropagule au fond de la capsule. La coupe transversale du (halle passant par nue cupule montrerait les propagules en place et, au milieu d’elles, des papilles productrices de mucilag(‘ dont le gonflement amène la chute de ces corps.

CUARACÉrS.

Les (diara sont des plan((‘s rameuses et grêles (lig. 21 G) (]ui vivent submergées dans les eaux douces de nos contrées. On doit les récolter pendant le mois de juin, époque à laquelle leurs organes générateurs sont complètement développés, (ies organes sont lixés en grand nombre à la face supérieure des feuilles les plus jeunes de la plante; celles-ci sont verticillées et recourbées vers le sommet de la tige, ce qui voile en partie les corps reproducteurs. Les organes mâles ou anthéridies [au, fig. 28, XXXI) sont sphériques et insérés au-dessous des organes femelles ou oogeimnes (o, même figure) à l’aisselle de folioles iinicellulaires. Les deux appareils sont verts dans leur jeunesse; les anthéridies adultes sont rouges; après la fécondation qui entraîne la destruction totale des anthéridies, les oogemmes se transforment en sporocarpes de couleur foncée.

On recherchera les plantes portant des anthéridies mûres et la sélection pourra se faire à l’œil nu, car les organes mâles en état convenable tranchent par leur coloration sur le reste de la plante, bien que leur volume ne dépasse pas un millimètre. On en séparera une feuille entière et on la portera, montée dans l’eau, sous le microscope, où on l’observera d’abord avec un grossissement de 100 diamètres environ (Pig. 28, XXXI). Cette feuille est formée supérieurement par des articles nus, au-dessous desquels se trouvent, comme dans la tige, une succession de nœuds, portant les folioles, également nus, et d’entre-nœiids revêtus d'une écorce formée par deux

TRAITK PHATIgUE DE MICROGRAPHIE

plans de cellules naissant des nœuds et s’accroissant en sens inverse pour opérer leur jonction vers le milieu de l’entre-nœud. On ne pourra voir les cellules qui servent de support à Voogemme qu’en détachant celui-ci, mais on distinguera sans peine sur l’appareil en place : 1% l’oosphère, immense

Fig. 216 6A. — Gorniination du sporocnrpe d(' Char a fragilis (Priiigsbcim).

cellule elliptique, à contenu granuleux, gorgée d’huile et d’amidon, qui occupe le centre de l’organe; 2®, les cinq longues cellules, contournées en spirale, protectrices de l’oosplière; 3°, les cinq petits éléments qui terminent ces spires et forment la coronule, cy«;4°,si l’oosphère est mûre, les petites fentes, /c, placées à la base de la coronule, servant à l’introduction des anthérozoïdes dans l’appareil.

anthêridie est plus complexe. Elle se présente entière comme une petite sphère formée par la juxtaposition et l’engrènement de huit plaques symétriquement disposées. Les quatre plaques rassemblées dans l’hémisphère supérieur sont triangulaires; celles de l’hémisphère inférieur sont quadrangulaircs et laissent passer entre elles le support de l’appareil. Ces plaques ou écAfSSom sontincolores extérieurement, mais leurparoi interne est tapissée de granulations rouges, produites par l’altération des grains de chlorophylle appliqués précédemment contre cette paroi. Les parties intéressantes de l’anthéridie se trouvent cachées au centre de la sphère; on les

mettra en évidence en opérant avec l’aiguille une pression légère et rapide sur la lamelle afin d’amener la dissociation des écussons en évitant de les écraser. Malgré toute la délicatesse apportée à l’opération, toutes les parties delà préparation ne seront pas en bon état; l’on pourra néanmoins s’assurer avec une amplification de 300 diamètres (fig. 29, XXXI) que chaque plaque porte, sur le milieu de sa face interne, une cellule incolore, dressée, dirigée par conséquent selon le rayon dans l’anthéridie indemne, la maniihne^ m. Cette cellule soutient à son extrémité une cellule arrondie, la tète^ t\ sur laquelle s’insèrent latéralement six cellules symétriquement disposées, les têtei secondaires^ t'\ qui donnent attache chacune, après dichotomie, à quatre files de 100 à 200 cellules aplaties, les fouets^ f. Tous les éléments des fouets contiennent un anthérozoïde grêle, roulé en spirale, renflé à une extrémité, terminé de l’autre par deux cils (fig. 30, XXXI).

L’oosphère étant fécondée, la coronule et la partie externe des tubes protecteurs se gélifient et disparaissent tandis que, tout au contraire, la partie interne de ceux-ci se lignifie, se colore fortement et persiste à la surface du sporocarpe qu’elle hérisse à la façon d’un pas de vis (fig. 31, XXXI).

3° THALLOPHYTES.

Nous étudierons dans ce chapitre en même temps que la reproduction des thallophytes la structure fort simple de ces êtresqui, dépourvus totalement d’appareil circulatoire, manquant de tige, de feuille et de racine, ne présentent jamais qu’un groupement peu compliqué de leurs éléments, bien que la différenciation morphologique de l’individu en plusieurs parties dislinctes soit, parfois, fort bien indiquée. La reproduction s’effectue tantôt au moyen d'organes différents nettement caractérisés, tantôt au moyen de corps tellement semblables qu’il faut suivre pas à pas le travail de la fécondation pour établir une distinction entre les deux organes mâle et femelle ; enfin, beaucoup ne se conservent que par un mode qui, en fait, ne s’éloigne pas beaucoup de la bouture.

Nous prendrons d’abord les algues, thallophytes à chlorophylle, qui s’écartent moins par leur mode de vie des végétaux supérieurs; nous terminerons par les champignons et les schizophytes qui occupent sans conteste le bas de l’échelle.